<?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?>
<!DOCTYPE article PUBLIC "-//NLM//DTD JATS (Z39.96) Journal Publishing DTD v1.3 20210610//EN" "JATS-journalpublishing1-3.dtd">
<article article-type="research-article" dtd-version="1.3" xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance" xml:lang="ru"><front><journal-meta><journal-id journal-id-type="publisher-id">nefr</journal-id><journal-title-group><journal-title xml:lang="ru">Нефрология</journal-title><trans-title-group xml:lang="en"><trans-title>Nephrology (Saint-Petersburg)</trans-title></trans-title-group></journal-title-group><issn pub-type="ppub">1561-6274</issn><issn pub-type="epub">2541-9439</issn><publisher><publisher-name>Pavlov First Saint-Petersburg State Medical University</publisher-name></publisher></journal-meta><article-meta><article-id pub-id-type="doi">10.24884/1561-6274-2018-23-1-18-31</article-id><article-id custom-type="elpub" pub-id-type="custom">nefr-1661</article-id><article-categories><subj-group subj-group-type="heading"><subject>Research Article</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="section-heading" xml:lang="ru"><subject>ОБЗОРЫ И ЛЕКЦИИ</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="section-heading" xml:lang="en"><subject>REVIEWS AND LECTURES</subject></subj-group></article-categories><title-group><article-title>МИКРОБИОТА КИШЕЧНИКА И ХРОНИЧЕСКАЯ БОЛЕЗНЬ ПОЧЕК. СООБЩЕНИЕ ВТОРОЕ</article-title><trans-title-group xml:lang="en"><trans-title>COLONIC MICROBIOTA AND CHRONIC KIDNEY DISEASES INTESTINAL MICROBIOTA AND CHRONIC KIDNEY DISEASE. PART II</trans-title></trans-title-group></title-group><contrib-group><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Лукичев</surname><given-names>Б. Г.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Lukichev</surname><given-names>B. G.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>Проф. Лукичев Борис Георгиевич, д-р мед. наук</p><p>197022, Санкт-Петербург, ул. Л. Толстого, д. 17. Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова, кафедра пропедевтики внутренних болезней. Тел.: (812)-234-01-65</p></bio><bio xml:lang="en"><p>Prof. Boris G. Lukichev MD, PhD, DMedSci </p><p>197022, St-Petersburg, L. Tolstoy st., 17, build. 54, First Pavlov St-Petersburg State Medical University, Department of propedeutics of internal diseases. </p><p>Phone: (812)-234-01-65 </p></bio><xref ref-type="aff" rid="aff-1"/></contrib><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Румянцев</surname><given-names>A. Ш.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Rumyantsev</surname><given-names>A. Sh.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>Проф. Румянцев Александр Шаликович, д-р мед. наук</p><p>199106, Санкт-Петербург, 21-я линия В.О., д. 8а. Санкт-Петербургский государственный университет, кафедра факультетской терапии. Тел.: +7 (812) 326-03-26 </p></bio><bio xml:lang="en"><p>Prof. Alexandr Sh.Rumyantsev MD, PhD, DMedSci</p><p>199106 Russia, Saint Petersburg, V.O., 21 line 8a. Saint Petersburg State University Department of Faculty Therapy</p><p>Phone: +7(812) 326-03-26 </p></bio><email xlink:type="simple">rash.56@mail.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff-2"/></contrib><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Панина</surname><given-names>И. Ю.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Panina</surname><given-names>I. Yu.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>Проф. Панина Ирина Юревна, д-р мед наук</p><p>197022, Санкт-Петербург, ул. Л. Толстого, д. 17. Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова, кафедра пропедевтики внутренних болезней. Тел.: (812)-234-01-65</p></bio><bio xml:lang="en"><p>Prof. Irina Yu. Panina MD, PhD, DMedSci</p><p>197022, Russia, St-Petersburg, L. Tolstoy st., 17, build. 54, First Pavlov St-Petersburg State Medical University, Department of propedeutics of internal diseases. </p><p>Phone: (812)-234-01-65 </p></bio><xref ref-type="aff" rid="aff-1"/></contrib><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Акименко</surname><given-names>В.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Akimenko</surname><given-names>V.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"/><bio xml:lang="en"><p>Akimenko V.</p><p>197022, Russia, St-Petersburg, L. Tolstoy st., 17, build. 54, First Pavlov St-Petersburg State Medical University, Department of propedeutics of internal diseases. </p><p>Phone: (812)-234-01-65 </p></bio><xref ref-type="aff" rid="aff-1"/></contrib></contrib-group><aff-alternatives id="aff-1"><aff xml:lang="ru"><institution>Кафедра пропедевтики внутренних болезней Первого Санкт-Петербургского государственного медицинского университета</institution><country>Россия</country></aff><aff xml:lang="en"><institution>Department of propedeutics of internal diseases of First Pavlov St-Petersburg State Medical University</institution><country>Russian Federation</country></aff></aff-alternatives><aff-alternatives id="aff-2"><aff xml:lang="ru"><institution>Кафедра пропедевтики внутренних болезней Первого Санкт-Петербургского государственного медицинского университета; кафедра факультетской терапии Санкт-Петербургского государственного университета</institution><country>Россия</country></aff><aff xml:lang="en"><institution>Department of propedeutics of internal diseases of First Pavlov St-Petersburg State Medical University; Department of Faculty Therapy of Saint Petersburg State University</institution><country>Russian Federation</country></aff></aff-alternatives><pub-date pub-type="collection"><year>2019</year></pub-date><pub-date pub-type="epub"><day>06</day><month>02</month><year>2019</year></pub-date><volume>23</volume><issue>1</issue><fpage>18</fpage><lpage>31</lpage><permissions><copyright-statement>Copyright &amp;#x00A9; Лукичев Б.Г., Румянцев A.Ш., Панина И.Ю., Акименко В., 2019</copyright-statement><copyright-year>2019</copyright-year><copyright-holder xml:lang="ru">Лукичев Б.Г., Румянцев A.Ш., Панина И.Ю., Акименко В.</copyright-holder><copyright-holder xml:lang="en">Lukichev B.G., Rumyantsev A.S., Panina I.Y., Akimenko V.</copyright-holder><license license-type="creative-commons-attribution" xlink:href="https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/" xlink:type="simple"><license-p>This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.</license-p></license></permissions><self-uri xlink:href="https://journal.nephrolog.ru/jour/article/view/1661">https://journal.nephrolog.ru/jour/article/view/1661</self-uri><abstract><p>Интерес к изучению роли желудочно-кишечного тракта в поддержании гомеостаза при хронической болезни почек является традиционным. Он послужил, в частности, отправной точкой для создания энтеросорбентов. Однако, если ранее основное внимание было обращено на механическое удаление ряда потенциально опасных биологически активных веществ, то в последнее время предметом интереса стала кишечная микробиота. Возрос интерес к коррекции дисбиоза с целью снижения уровня уремических токсинов, активности окислительного и воспалительного стресса. Вторая часть обзора литературы на эту тему посвящена вопросам применения пребиотиков, пробиотиков и синбиотиков.Подробно изложены современные трактовки терминов. Дана классификация средств, используемых при хронической болезни почек. Представлены потенциальные механизмы их действия. Обсуждены позитивные и негативные результаты экспериментальных и клинических исследований.</p></abstract><trans-abstract xml:lang="en"><p>Interest in studying the role of the gastrointestinal tract in maintaining homeostasis in chronic kidney disease is a traditional one. It served, in particular, as a starting point for the creation of enterosorbents. However, if earlier the main attention was paid to the mechanical removal of a number of potentially dangerous biologically active substances, recently an intestinal microbiota has become an object of interest. The first part of the review of the literature on this topic is devoted to questions of terminology, the normal physiology of the colon microbiota. A detailed description of dysbiosis is given. The features of the main groups of microorganisms are reflected. The hypothetical and confirmed interrelations of the intestine-kidney axis are presented. The pathogenetic mechanisms of the influence of colon dysbiosis on the processes of local and systemic inflammation are discussed. The influence of dysbiosis on the state of the kidney parenchyma and its participation in the progression of CKD are debated.</p></trans-abstract><kwd-group xml:lang="ru"><kwd>микробиота</kwd><kwd>дисбиоз</kwd><kwd>хроническая болезнь почек</kwd></kwd-group><kwd-group xml:lang="en"><kwd>microbiota</kwd><kwd>dysbiosis</kwd><kwd>chronic kidney disease</kwd></kwd-group></article-meta></front><body><p>В первой части обзора литературы мы пока­зали, что микробиота кишечника активно уча­ствует в генерации уремических токсинов (УТ), концентрация которых в содержимом кишечника нарастает по мере прогрессирования хронической болезни почек (ХБП). В свою очередь, УТ оказы­вают не только местное, но и системное действие, вызывая развитие функциональных и структур­ных изменений в кишечнике с соответствующи­ми патофизиологическими последствиями в виде повреждения плотных контактов эпителиоцитов, нарушения микроциркуляции кишечной стенки, а в случае тяжёлого уремического состояния - транслокацию бактерий в системный кровоток. Системное воспаление, тесно связанное с дисбиозом кишечника при ХБП вносит свой вклад в представленную картину.</p><p>Настоящее сообщение посвящено вопросам возможного воздействия на микробиоту при ХБП.</p><p>В последнее время возрос интерес к коррекции дисбиоза с целью снижения уровня УТ, актив­ности окислительного и воспалительного стрес­са [<xref ref-type="bibr" rid="cit1">1</xref>]. Признание роли изменений микробиоты в патогенезе системного воспаления при ХБП тре­бует изучения возможностей их терапевтической коррекции. N.D. Waziri [<xref ref-type="bibr" rid="cit2">2</xref>] выделяет следующие возможные направления коррекции микробиоты:</p><p>К этому можно было бы добавить нормали­зацию времени транзита химуса по кишечнику</p><p> </p><table-wrap id="table-1"><caption><p>Таблица 1 / Table 1</p><p>Изменения в научной трактовке термина «пребиотик» с момента его появления</p><p>Changes in the scientific interpretation of the term «prebiotic» since its inception</p></caption><table><tbody><tr><th>Год</th><th>Определение</th><th>Авторы</th></tr><tr><td>1995</td><td>Неперевариваемые компоненты пищи, которые улучшают здоровье хозяина, избирательно стимулируя рост и/или активность одного или ограниченного числа видов бактерий в толстой кишке</td><td>[12]</td></tr><tr><td>2003</td><td>Неперевариваемые вещества, которые оказывают положительное физиологическое воздействие на орга­низм хозяина, избирательно стимулируя благоприятные рост или активность ограниченного числа бактерий, обитающих в кишечнике в естественных условиях</td><td>[16]</td></tr><tr><td>2004</td><td>Избирательно ферментированные ингредиенты, которые вызывают специфические изменения как в со­ставе, так и/или в активности микрофлоры желудочно-кишечного тракта, что приносит благотворно влияет на здоровье хозяина</td><td>[17]</td></tr><tr><td>2008</td><td>Нежизнеспособные компоненты пищи, которые приносят пользу для здоровья хозяина за счет модуляции микробиоты</td><td>[18]</td></tr><tr><td>2010</td><td>Избирательно ферментированные ингредиенты, которые вызывают специфические изменения в составе и/ или активности микробиоты пищеварительного тракта и приносят пользу здоровью хозяина</td><td>[19]</td></tr><tr><td>2015</td><td>Неперевариваемые соединения, которые принимают участие в метаболизме микроорганизмов в кишечнике, за счет чего модулируют состав и/или активность микробиоты кишечника, оказывая благоприятное физио­логическое воздействие на организм хозяина</td><td>[13]</td></tr></tbody></table></table-wrap><p>Среди причин количественных и качественных микробиоты важное значение при ХБП придают особенностям питания больных, включая сниже­ние квоты белка, потребления пищевых волокон, изменения транзита химуса, а также полипрагмазию [5-8]. С течением времени вышеперечислен­ные факторы начинают играть значимую роль в прогрессировании атеросклероза и других ослож­нений при ХБП [9, 10].</p><sec><title>ПРЕБИОТИКИ</title><p>Предпосылкой возникновения понятия пребиотиков стала идея бифидус-фактора. В 1960-е годы был выявлен компонент женского молока, ко­торый стимулировал развитие бифидобактерий в кишечнике ребенка. Было установлено, что бифидус-фактор женского молока представляет собой сложный комплекс различных олигосахари­дов и гликанов [<xref ref-type="bibr" rid="cit11">11</xref>]. В дальнейшем бифидус- (или бифидогенными) факторами стали называть веще­ства, которые способствовали росту бактерий рода Bifidobacterium не только in vivo, но и in vitro. Бифидогенный эффект был отмечен при применении лактулозы, галакто- и фруктоолигосахаридов.</p><p>Концепция использования пребиотиков впер­вые была предложена G.R.Gibson и M.B. Rober- froid в 1995 г. [<xref ref-type="bibr" rid="cit12">12</xref>], т.е. значительно позже по сравнению с пробиотиками. Ее оригинальность во многом связана с тем, что данные вещества не перевариваются в желудочно-кишечном тракте хозяина и при этом оказывают благоприятное воз­действие на состав его микрофлоры. Пребиотики - это в основном некрахмальные полисахари­ды и олигосахариды пищи. В повседневной жиз­ни они входят в состав круп, печенья, шоколада, молочных и многих других продуктов. Наиболее изученными являются [13-15]:</p><p>Приходится признать, что единого мнения о критериях и классификации пребиотиков в на­стоящее время нет. В табл. 1 представлены изме­нения в научной трактовке термина с момента его появления.</p><p>Таким образом, понятие «пребиотик» стано­вится более широким, и фокус смещается на его функциональные возможности. Перефразируя официальное определение, можно рассматривать пребиотики как неперевариваемые в верхних от­делах пищеварительного тракта углеводы, кото­рые ферментируются бактериями толстой киш­ки с образованием короткоцепочечных жирных кислот (КЦЖК) в качестве конечных продуктов [<xref ref-type="bibr" rid="cit20">20</xref>]. При этом необходимо учитывать сложность состава кишечной микробиоты, недостаточное понимание взаимодействия разных видов и штам­мов при метаболизме пребиотиков, неопределен­ности понятий «полезных» и «вредных» микроор­ганизмов, а также проблем с трактовкой понятия «польза для здоровья» [13, 21].</p><p>Несмотря на перечисленные дидактические трудности, есть общее понимание того, что пребиотик должен соответствовать нескольким кри­териям:</p><p>Основным в современной характеристике пребиотиков является их избирательное стимулирова­ние развития полезных для человеческого организ­ма представителей кишечной микрофлоры, к кото­рым в первую очередь относят бифидобактерии и лактобациллы. Все пребиотики можно классифи­цировать по нескольким признакам (табл. 2) [<xref ref-type="bibr" rid="cit22">22</xref>].</p><p>В отличие от научных формулировок прави­тельственные и общественные структуры, от­вечающие за здравоохранение, используют одно из следующих определений: пищевые волокна и пребиотики (табл. 3).</p><p> </p><table-wrap id="table-2"><caption><p>Таблица 2 / Table 2</p><p>Классификация пребиотиков</p><p>Classification of prebiotics</p></caption><table><tbody><tr><th>Признак</th><th>Вид</th></tr><tr><td>По происхождению</td><td>Природный
Натуральный
Искусственный</td></tr><tr><td>По своей химиче­ской структуре</td><td>Углевод
Белок
Витамин
Производное</td></tr><tr><td>По длине молекулы</td><td>Мономерный
Димерный
Олигомерный
Полимерный</td></tr><tr><td>Для олигомерных и полимерных пребиотиков по основно­му типу химической связи</td><td>β-1-3 связь, β-1-6 связь, β-1-4 связь и т.д.
по пропорциональным соотношениям этих связей в сложных молекулах</td></tr><tr><td>По способу получения</td><td>Выделение из природных источников (соя, сахарный тростник, сахарная свекла, топинамбур, цикорий, молоч­ная сыворотка, водоросли, грибы и актиномицеты, злаковые и др.) Ферментативный или кислотный ги­дролиз
Химический синтез</td></tr></tbody></table></table-wrap><p>В настоящее время всем критериям классифи­кации пребиотиков отвечают только бифидогенные неперевариваемые олигосахариды (в частно­сти, инулин, продукт его гидролиза - олигофрук­тоза и транс- галактоолигосахариды) [<xref ref-type="bibr" rid="cit25">25</xref>]. При­менение пребиотиков теоретически может быть потенциально полезным в связи со следующими эффектами [<xref ref-type="bibr" rid="cit26">26</xref>]:</p><p>Ферментация белка из непереваренных или эн­догенных источников белка в отсутствие сбражи­ваемых углеводов может привести к образованию и накоплению потенциально вредных метаболи­тов, таких как сульфиды, амины, аммиак и раз­личные фенолы [<xref ref-type="bibr" rid="cit27">27</xref>]. В отсутствие сбраживаемых углеводов концентрация КЦЖК снижается, а pH среды увеличивается, что приводит к созданию благоприятных условий в дистальном отделе тол­стой кишки для эффективной ферментации белка, выработке жирных кислот с разветвленной цепью, а также различных фенолов и индолов. Увеличение сахаролитической, а не протеолитической фермен­тации имеет ряд потенциальных преимуществ для здоровья. V. De Preter и соавт. [<xref ref-type="bibr" rid="cit28">28</xref>] на фоне приема лактулозы в дозе 15 г/сут однократно или 10 г х 2 раза/сут обнаружили снижение аммиака в моче, тогда как концентрация аммиака в фекалиях не ме­нялась. Такой же эффект был отмечен в отношение уровеня п-крезола в моче [<xref ref-type="bibr" rid="cit29">29</xref>]. Четырехнедельное применение инулина при (5 г х 3 раза/сут) сопро­вождалось снижением концентрации аммиака как в моче, так и в фекалиях [<xref ref-type="bibr" rid="cit30">30</xref>].</p><p> </p><table-wrap id="table-3"><caption><p>Таблица 3 / Table 3</p><p>Определения терминов «пищевые волокна» и «пребиотики», используемые в разных странах</p><p>Definitions of the terms «dietary fiber» and «prebiotics» used in different countries</p><p>Примечания. FDA - Управление по контролю за качеством пищевых продуктов и лекарственных препаратов США (Food and Drug Administration, FDA, US FDA), правительственное агентство, подчинённое министерству здравоохранения США. WHO - Всемирная организация здравоохранения (World Health Organization, WHO). FAO - Продовольственная и сельскохозяйствен­ная организация ООН (Food and Agriculture Organization, FAO). FOSHU - Food For Specified Health Uses (продукты питания для конкретных целей здравоохранения - терминология, принятая в Японии).</p></caption><table><tbody><tr><th>Пищевые волокна</th><th> </th></tr><tr><td>FDA</td><td>Неусваиваемые растворимые и нерастворимые (как изолированные, так и синтетические) непере- вариваемые углеводы, которые содержат не менее 3 мономерных единиц и обладают полезными для здоровья человека физиологическими эффектами.</td></tr><tr><td>WHO)/FAO</td><td>Пищевые волокна (клетчатка) представляют собой углеводные полимеры с 10 мономерными единицами или более, которые не гидролизуются эндогенными ферментами, обнаруживаемыми в тонкой кишке человека, и относятся к нижеуказанным категориям:
1.  Пищевые углеводные полимеры, встречающиеся в природе в потребляемой пище.
2.  Углеводные полимеры, которые были получены из пищевого сырья физическими, ферментативными или химическими способами.
3.  Синтетические углеводные полимеры.
Пищевые волокна имеют физиологическую пользу для здоровья, что подтверждается общепринятыми научными данными компетентных органов</td></tr><tr><th>Пребиотики</th><th> </th></tr><tr><td>FDA,
не имеет собствен­ного определения пребиотиков</td><td>Относятся к продуктам комплементарной и нетрадиционной медицины, подлежат регулированию FDA. Пребиотики включены в «биологически-основанную» группу продуктов, регулируемую Центром комплементарного и интегративного здоровья (подмножество NIH), используя определение 1995 года. Производители также могут самостоятельно подтвердить статус «Generally Recognized as safe» (GRAS, FDA) для продуктов, помеченных как пребиотики [23]</td></tr><tr><td>EFSA, не имеет собствен­ного определения пребиотиков</td><td>Используют определение FAO: «Нежизнеспособные компоненты пищи, которые приносят пользу для здоровья хозяина за счет модуляции микробиоты» [24]</td></tr><tr><td>Canada Food Inspec­tion Agency</td><td>Термин «пребиотик» допускается только для продуктов, которые удовлетворяют требованиям под­твержденной заявки в области охраны здоровья</td></tr><tr><td>FOSHU</td><td>Термин «пребиотик» не используется, используется определение - «продукты для модификации состоя­ния желудочно-кишечного тракта. Под этим понимают продукты питания/ингредиенты: олигосахариды, лактоза, бифидобактерии, молочнокислые бактерии, неперевариваемые декстрины, полидекстроза, гуаровая камедь, подорожника семя и т. д.</td></tr></tbody></table></table-wrap><p> </p><p>Слизистая оболочка кишечника и микробио­та являются ключевыми игроками, препятствую­щими инвазии Escherichia coli, Salmonella spp, Campylobacter и других патогенных бактерий в желудочно-кишечном тракте. Пять потенциально реализуемых ими механизмов включают [<xref ref-type="bibr" rid="cit31">31</xref>]:</p><p>Клетки кишечного эпителия продуцируют му­цины, которые образуют гидратированный гель, препятствующий контакту крупных частиц (боль­шинства бактерий) непосредственно с эпители­альным клеточным слоем. Однако даже при этом в среднем около 4 % крупных белковых молекул (например ферментов) проходят транскишечный барьер и попадают в кровь в неизмененном виде [<xref ref-type="bibr" rid="cit32">32</xref>].</p><p>Практически все белки являются антигенами, стимулирующими иммунную систему. При этом небольшие полипептидные молекулы с молекулярной массой менее 5 кДа, как правило, низкоиммуногенны. Минимальный расчетный размер олигопептида, способный индуцировать иммун­ный ответ, составляет 6-12 аминокислотных остатков с молекулярной массой около 450 Да. Как правило, размеры такой молекулы превыша­ют 5-6 А, в связи с чем она не может пройти через плотное соединение эпителиоцитов.</p><p>Для оценки проницаемости кишечника у лиц с нормальной скоростью клубочковой фильтрации широко используют тест с маннитолом и лактулозой. Маннитол (молекулярная масса 182 Да) путем пассивного транспорта полностью реаб- сорбируется, тогда как лактулоза (молекулярная масса 342 Да) через плотные контакты практиче­ски не проходит. Поэтому в норме в моче отноше­ние «маннитол/лактулоза» составляет менее 0,03. Увеличение этого соотношения расценивают как диагностический признак повышенной проницае­мости кишечника («leaky gut» синдром, синдром «дырявой кишки»). Однако при снижении скоро­сти клубочковой фильтрации данный тест непри­меним. Поэтому при ХБП олриентируются на из­менение концентрации УТ в сыворотке крови.</p><p>Барьерные механизмы эпителиальной выстил­ки пищеварительного тракта во многом определя­ются рядом белков плотных соединений, в част­ности, клаудином, окклюдином, белком зоны ок- клюдина-1. Их продукцию можно модулировать при помощи изменения рациона. Так, применение диет с высоким содержанием жира, фруктозы, а также употребление алкоголя сопровождаются снижением синтеза перечисленных белков [<xref ref-type="bibr" rid="cit33">33</xref>]. Аналогичным эффектом обладает изменение микробиоты со снижением образования КЦЖК [34-36].</p><p>Применение индивидуально подобранных комбинированных смесей с КЦЖК у крыс сопро­вождалось увеличением трансэпителиального электрического сопротивления и уменьшением маркеров параклеточного транспорта в стенке слепой кишки [<xref ref-type="bibr" rid="cit37">37</xref>]. Использование олигофрукто­зы способствовало селективному увеличению по­пуляции Bifidobacterium spp, с чем исследовате­ли связывали активацию выработки эндогенного глюкагоноподобного пептида-2, улучшего барьер­ную функцию кишечника [<xref ref-type="bibr" rid="cit38">38</xref>].</p><p>Влияние первичных и вторичных метаболитов, которые образуются при прямой или косвенной ферментации отдельных соединений на здоро­вье человека, является предметом пристального внимания. Короткоцепочечные жирные кислоты (КЦЖК) - жирные кислоты с алифатической це­пью менее шести атомов углерода синтезируются микробиотой из углеводов, аминокислот и других нутриентов, которые не абсорбируются в прокси­мальном отделе тонкой кишки. 90-95 % из них представлены ацетатом, пропионатом и бутиратом. Ацетат является предпочтительным источни­ком обменной энергии для мышц [<xref ref-type="bibr" rid="cit39">39</xref>]. Пропионат и бутират негативно взаимосвязаны с активно­стью воспаления слизистой оболочки кишки [<xref ref-type="bibr" rid="cit40">40</xref>]. Стоит отметить, однако, что даже между здоро­выми лицами в ответ на прием одного и того же пищевого волокна продукция КЦЖК широко ва­рьирует [<xref ref-type="bibr" rid="cit41">41</xref>].</p><p>Снижение риска остеопороза и переломов ко­стей является критически важной проблемой во всем мире: в США более 28 миллионов человек страдают остеопорозом или низкой костной мас­сой, а у каждого восьмого гражданина Евросоюза старше 50 лет ежегодно регистрируют спонтан­ные переломы позвоночника [<xref ref-type="bibr" rid="cit42">42</xref>]. Повышение биодоступности и усвоения кальция при приеме пребиотиков является критической целью для здо­ровой структуры костей, по крайней мере у под­ростков и пожилых людей [<xref ref-type="bibr" rid="cit43">43</xref>]. Дистальный отдел кишечника является одним из основных участков усвоения кальция, и его абсорбция стимулируется химическими изменениями содержимого, а также увеличением кислотной ферментации пищевых волокон различными бактериями. Клинические исследования по измерению абсорбции минера­лов в разных популяциях показали неоднознач­ные результаты. В 4 исследованиях было показа­но, что инулин, олигофруктоза, галактоолигосахариды и короткоцепочечные фруктоолигосахариды не оказывали существенного влияния на усвоение кальция, когда участники употребляли пребиотики в широком диапазоне 1-17 г/сут [44-47].</p><p>Вместе с тем, в нескольких клинических ис­следованиях с использованием пребиотиков в дозе 8-40 г/сут было показано значительное уве­личение абсорбции кальция [48-51]. Такие раз­ные результаты могут быть связаны с особенно­стями формирования групп воздействия: возраст, гендерное соотношение, перименопаузальный период у женщин, вариация состава микробиоты.</p><p>Потребление пребиотиков трудно измерить, так как они встречаются в разных пищевых группах, в широком диапазоне пищевых добавок, и для них не разработаны как единые аналитические тесты, так и универсально согласованные методы опреде­ления. Тем не менее, по оценкам аналитиков, рост рынка пребиотиков продолжит расти, превысив 7,5 млрд долларов к 2023 году [<xref ref-type="bibr" rid="cit52">52</xref>].</p><p>В Бельгии было проведено 16-недельное ран­домизированное, плацебо-контролируемое по­перечное исследование, в котором 20 практиче­ски здоровых добровольцев принимали смеси инулина и фруктоолигосахаридов в объемном соотношении 50/50 («Synergy 1», «Orafti», Бель­гия), Lactobacillus casei Shirota и Bifidobacterium breve Yakult. Прием пребиотиков сопровождался снижением в моче концентрации п-Кр и 15N па­раллельно увеличению уровня п-Кр в фекалиях. Однако при приеме препарата более 1 мес этот эффект исчезал, несмотря на увеличение содер­жания бифидобактерий. Применение Lactobacil­lus casei Shirota и Bifidobacterium breve Yakult со­провождалось лишь тенденцией к снижению экс­креции с мочой только 15N [<xref ref-type="bibr" rid="cit53">53</xref>]</p><p>Другим способом снижения образования бак­териальных токсинов является ограничение или изменение соотношения доступных углеводов к азоту, которое отражает бактериальный метабо­лизм аминного азота. Поэтому для того, чтобы снизить выработку токсичных метаболитов, воз­никающих в результате ферментации белка, важ­но увеличить доступность углеводов в толстой кишке. Одним из возможных подходов к этому является модификация диеты с использованием фруктов и овощей, являющихся важными источ­никами пищевых волокон. Вегетарианская диета значимо снижает экскрецию с мочой индоксил- сульфата и п-Кр [<xref ref-type="bibr" rid="cit54">54</xref>]. Однако эти продукты, как правило, богаты калием, в связи с чем возможно­сти их применения при ХБП весьма ограничены. Другая диетическая модификация, традиционно применяемая при дисфункции почек для умень­шения образования уремических токсинов, - ограничение потребления белка. Стоит отметить, что строгое ее выполнение с учетом практически отсутствия диетологов, знающих особенности ве­дения нефрологических больных, не всегда доста­точно результативно и может в ряде случаев спо­собствовать развитию белково-энергетической недостаточности.</p><p>Поэтому для изменения скорости ферментатив­ных реакций, селективной стимуляции роста или активности определенных видов микроорганиз­мов по типу конкуренции за источники питания предпочтительным представляется применение официнальных пребиотиков. Так, применение оли- гофруктозного инулина в дозе 10 г/сут в течение 4 нед у пациентов с ХБП С5д способствовало ро­сту штаммов рода Bifidobactera и Lactobacilla и со­провождалось снижением концентрации п-крезола в сыворотке крови на 20 % [<xref ref-type="bibr" rid="cit55">55</xref>].</p><p>D.Z. Bliss и др. [<xref ref-type="bibr" rid="cit56">56</xref>] в рандомизированном плацебоконтролируемом исследовании у 16 па­циентов с ХБП установили, что добавление к малобелковой диете гуммиарабика пребиотика («TICACEL MC HV», «TIC Gums, Belcamp, MD») в дозе 25 г χ 2 раза/сут в течение 4 нед привело к увеличению экскреции фекального азота и сниже­нию азота мочевины в сыворотке крови более чем в 1,5 раза по сравнению с группой плацебо.</p><p>T.L. Sirich и др. [<xref ref-type="bibr" rid="cit57">57</xref>] в рандомизированном слепом плацебо-контролируемом клиническом исследовании в течение 6 нед изучали влияние перорального приёма кукурузного амилопектина («Hi-maize-260», «Ingredion Incorporated», Вели­кобритания) у 56 диализных пациентов. Группа сравнения получала перевариваемый кукурузный крахмал. Пищевые волокна пациенты получали в дозе 15 г/сут в виде саше однократно в течение первой недели и по 2 саше - в течение последу­ющего времени. 5 пациентов в группе лечения и 5 пациентов в группе контроля сократили прием до одного саше в связи с появлением метеориз­ма и/или неоформленного на 3-5-й неделе на­блюдения. В группе лечения сывороточная кон­центрация азота мочевины снизилась с 65±22 до 56±14 мг/дл, п-крезола - с 3,3±1,5 до 2,9±1,6 мг/ дл, индоксил сульфата - с 3,5±0,9 до 2,9±1,4 мг/ дл. В группе контроля изменений не произошло. N.D. Vaziri [<xref ref-type="bibr" rid="cit2">2</xref>], комментируя результаты цитируе­мой выше работы, отмечает кратковременный период наблюдений и, вероятно, недостаточную дозу пребиотика, что, в целом, затрудняет одно­значную оценку полученного эффекта.</p><p>Американские исследователи моделирова­ли интерстициальный нефрит у 24 крыс линии Спрэг-Доули, используя кормление 0,7 % адени- ном в течение 2 нед. Далее 6 крыс получали стан­дартную диету, 9 - с добавкой перевариваемого кукурузного крахмала и 9 - с добавкой кукуруз­ного амилопектина («Hi-maize-260», «Ingredion Incorporated», Великобритания). У крыс, по­треблявших пищу с низким содержанием клет­чатки, наблюдали активацию синтеза провос- палительных, прооксидантных и профиброзных маркерных молекул; подавление ферментов антиоксидантной защиты и повреждение плотных контактов эпителия толстой кишки. Применение «Hi-maize-260» значительно ослабляло выражен­ность окислительного и воспалительного стресса, способствовало улучшению состояния кишечного эпителия [<xref ref-type="bibr" rid="cit58">58</xref>].</p><p>Возможным подходом к увеличению содержа­ния углеводов в кишечнике является применение ингибитора альфа-гликозидазы (акарбозы). Дан­ный фермент участвует в метаболизме углеводов. Его супрессия в тонкой кишке сопровождается последующей их ферментацией бактериями тол­стой кишки и снижением уровня п-крезола в моче, плазме и фекалиях у лиц с нормальной функцией почек. В связи с этим можно предположить, что прием акарбозы может привести к снижению про­дукции микробно-связанных уремических токси­нов у пациентов с ХБП [<xref ref-type="bibr" rid="cit59">59</xref>].</p></sec><sec><title>ПРОБИОТИКИ</title><p>В 2014 году Международная научная ассо­циация по пробиотикам и пребиотикам приняла консенсусное заявление, уточняющее сферу при­менения и надлежащее использование термина «пробиотик» [<xref ref-type="bibr" rid="cit60">60</xref>]. В соответствии с ним пробио­тики представляют собой природные или гене­тически модифицированные микроорганизмы, экспрессирующие специфические экзогенные ферменты и способные выживать в желудочном соке и желчи, повышать концентрацию симбио- тонов в толстой кишке и приносить пользу для здоровья. С сожалением приходится признать, что, несмотря на это, термин «пробиотик» часто используется неправильно для маркетинга про­дукции, которая не соответствует приведенным выше критериям.</p><p>Механизмы, регулирующие реакции кишеч­ного эпителия на пробиотики, сложны и плохо изучены. Некоторые штаммы могут блокировать проникновение патогена в эпителиальную клетку, обеспечивая физический барьер (устойчивость к колонизации) и конкуренцию за зону обитания, тем самым исключая сайт для репликации пато­генов. Например, Lactobacillus helveticus облада­ет гидрофобными свойствами и, следовательно, способен неспецифически связываться с клетка­ми эпителия [<xref ref-type="bibr" rid="cit61">61</xref>]. Кроме того, большинство про­биотиков способствуют создают барьера слизи за счет увеличения синтеза и секреции муцина бока­ловидными клетками [<xref ref-type="bibr" rid="cit62">62</xref>].</p><p>Пробиотики могут повышать выживаемость клеток и уменьшать активность апоптоза при раз­личных неблагоприятных воздействиях В частно­сти, было обнаружено, что растворимые факторы, секретируемые Lactobacillus rhamnosus, активиру­ют протеинкиназу B и предотвращают индуциро­ванный цитокинами апоптоз в клетках кишечника человека и мыши [<xref ref-type="bibr" rid="cit63">63</xref>]. На монослое клеток эпи­телия кишечника было показано, что добавление к культуре белков, выделенных из Lactobacillus Rhamnosus (LGG-s 1-10 мкг/мл; p40 0,1-1,0 мкг/ мл; p75 0,1-1,0 мкг/мл), защищает кишечный ба­рьер от повреждения, вызванного перекисью во­дорода [<xref ref-type="bibr" rid="cit64">64</xref>].</p><p>Пробиотики поддерживают целостность ки­шечного эпителия путем увеличения стабильно­сти межклеточных апикальных плотных соедине­ний за счет усиления регуляции экспрессии белка зоны окклюдина-1 или путем предотвращения пе­рераспределения белка в данной зоне [<xref ref-type="bibr" rid="cit65">65</xref>]. Защит­ные эффекты пробиотиков на функцию кишечни­ка были подтверждены в исследованиях in vivo с использованием инфекции Citrobacter rodentium на мышиной модели бактериального инфекцион­ного колита [<xref ref-type="bibr" rid="cit19">19</xref>]. Это наблюдение следует учиты­вать в клинических исследованиях у пациентов с ХБП, у которых часто наблюдается хроническое воспаление ЖКТ и где пробиотики могут усили­вать барьерную функцию слизистой оболочки.</p><p>В нескольких исследованиях было подтверж­дено, что пробиотики могут повышать резистент­ность к пищевым инфекциям [<xref ref-type="bibr" rid="cit66">66</xref>]. Это представ­ляет особый интерес, поскольку пациенты с ХБП подвергаются более высокому риску инфекции Clostridium difficile [<xref ref-type="bibr" rid="cit67">67</xref>]. Было показано, что не­которые пробиотические штаммы продуцируют сложные антибактериальные соединения, назы­ваемые бактериоцинами или антимикробными пептидами. Данные соединения могут действо­вать в качестве агентов, облегчающих конкурен­цию пробиотика с резидентной микробиотой, как агенты, уничтожающие патогены, или служить сигнальными пептидами для других бактерий или иммунной системы. Аналогично функционируют лактобациллы, продуцирующие молочную кисло­ту, которая оказывает антимикробное действие, снижая местный рН в просвете кишечника. [<xref ref-type="bibr" rid="cit68">68</xref>], а также стимулируя продукцию β-дефенсина энтероцитами [<xref ref-type="bibr" rid="cit69">69</xref>].</p><p>Уменьшение присутствия патобионтов при применении пробиотиков позволяет предпола­гать, что с их помощью можно усиливать как врожденные, так и адаптивные силы иммунной системы хозяина. Например, некоторые пробио­тические штаммы обладают способностью сти­мулировать дифференцировку В-клеток и увели­чивать продукцию секреторного IgA. Полимер­ный IgA включается в слой слизи, покрывающей эпителий кишечника, и связывается с патоген­ными микроорганизмами, тем самым снижая их способность получать доступ к эндотелиальным клеткам. Другие пробиотические штаммы стиму­лируют систему врожденного иммунитета, пере­давая сигналы дендритным клеткам, которые за­тем перемещаются в брыжеечные лимфатические узлы, где индуцируют регуляторные Т-клетки (FoxP3+) и продуцируют противовоспалительные цитокины (интерлейкин-10 и трансформирующий фактор роста-β). Было показано, что Saccharomy- ces boulardii уменьшает активность воспаления кишечника за счет модуляции Т-клеточного отве­та и уменьшения транспорта ТЫ-клеток, что при­водит к снижению уровня провоспалительного цитокина-интерферона-γ [<xref ref-type="bibr" rid="cit70">70</xref>]. Пробиотики также могут модулировать активацию провоспалительного ядерного фактора кВ для предотвращения утечки липополисахарида и уменьшения секре­ции интерлейкина-8, который является мощным хемоаттрактантом нейтрофилов в местах повреж­дения кишечника [<xref ref-type="bibr" rid="cit71">71</xref>].</p><p>Пробиотики способны влиять на метабо­лизм не только местно, но и на уровне организ­ма. Штаммы Lactobacillus улучшают гомеостаз глюкозы и уменьшают активность воспаления и развитие стеатоза печени [<xref ref-type="bibr" rid="cit72">72</xref>]. В эксперименте на мышах производили колонизацию кишечни­ка трансформированной бактерией, которая уве­личивает активность гидролазы желчных солей, влияет на метаболические процессы хозяина, уменьшает количество тауро-бета-муриколовой кислоты, мощного антагониста рецептора фарне- зоида X. Это приводило к синтезу холестерина в печени [<xref ref-type="bibr" rid="cit73">73</xref>]. Поскольку многочисленные извест­ные пробиотики повышают активность гидрола- зы желчных солей, это может частично объяснять их аналогичные метаболические эффекты [<xref ref-type="bibr" rid="cit74">74</xref>].</p><p>В недавних исследованиях было показано, что Akkermansia muciniphila увеличивает содержание короткоцепочечных жирных кислот и улучшает гомеостаз глюкозы/инсулина, а также липидный обмен путем соединения со специфическими ре­цепторами, связанными с G-белком 41/43, увели­чивая выработку глюкагоноподобного пептида-1 и пептида YY энтероэндокринной системой. клет­ки или противовоспалительное действие на выра­ботку иммунных клеток [<xref ref-type="bibr" rid="cit75">75</xref>].</p><p> </p><table-wrap id="table-4"><caption><p>Таблица 4 / Table 4</p><p>Представители микробиоты кишечника, обладающие уреазной активностью, как фактором вирулентности [87]</p><p>Representatives of the intestinal microbiota with urease activity as a virulence factor [87]</p></caption><table><tbody><tr><th>Бактерии</th><th>Грибы</th></tr><tr><td>Bifidobacterium longum subsp.</td><td>Actinomyces naeslundii</td></tr><tr><td>Clostridium perfringens</td><td>Cryptococcus neoformans</td></tr><tr><td>Helicobacter pylori</td><td>Coccidioides posadasii</td></tr><tr><td>Klebsiella spp</td><td> </td></tr><tr><td>Klebsiella pneumonie</td><td> </td></tr><tr><td>Proteus mirabilis</td><td> </td></tr><tr><td>Proteus spp.</td><td> </td></tr><tr><td>Salmonella spp.</td><td> </td></tr><tr><td>Staphylococcus saprophyticus</td><td> </td></tr><tr><td>Streptococcus pyogenes</td><td> </td></tr><tr><td>Streptococcus thermophilus</td><td> </td></tr><tr><td>Ureoplasma urealyticum</td><td> </td></tr><tr><td>Yersinia enterocolitica</td><td> </td></tr></tbody></table></table-wrap><p>К сожалению, рандомизированных клиниче­ских испытаний по применению пробиотиков при ХБП не проводилось. В отдельных исследовани­ях изучали суррогатные конечные точки, такие как изменения концентрации в сыворотке крови или экскреции с мочой ряда биомаркеров, напри­мер, уремических токсинов и цитокинов. Твердые клинические конечные точки не изучались. Объ­ем и дизайн исследований, как правило, не соот­ветствовали принципам доказательной медицины [<xref ref-type="bibr" rid="cit76">76</xref>]. Кроме того, одним из ограничений для про­биотической терапии является отсутствие данных об устойчивом выживания пробиотиков в толстой кишке у пациентов с ХБП [<xref ref-type="bibr" rid="cit77">77</xref>].</p><p>Однако существует мнение о благотворном влиянии пробиотиков на течение ХБП. В одной из ранних работ показано, что пероральный при­ем Lactobacillus acidofillus у 8 пациентов на гемо­диализе сопровождался умеренным улучшением аппетита, увеличением калорийности рациона, массы тела, окружности мышц плеча, уровня аль­бумина в сыворотке крови. При этом отмечено снижение концентрации в сыворотке крови диме­тиламина с 224±47 до 154±47 мкг/дл и нитрозоди- метиламина с 178±67 до 83±49 нг/кг [<xref ref-type="bibr" rid="cit78">78</xref>].</p><p>N. Ranganathan и др. моделировали ХБП в экс­перименте у 36 крыс линии Спрэг-Доули путем 5/6 нефрэктомии. Назначали Bacillus pasteurii и Lactobacillus sporogenes в течение 16 нед в дозе 5 г/сут. Отмечали замедление нарастания уровня мочевины и креатинина в сыворотке крови, уве- дичение продолжительности жизни в среднем на 30 сут [<xref ref-type="bibr" rid="cit79">79</xref>]. В последующем эта группа авторов опубликовала результаты исследований о воздей­ствии смеси пробиотиков (Lactobacillus acidophi­lus, Bifidobacterium longum, Streptococcus ther- mophilus) в течение 12 нед на пациентов c ХБП С3-4 стадии. В частности, 86 % обследуемых отмечали улучшение качества жизни, зарегистри­ровано снижение уровня креатинина (у 43 %), мочевины (у 63 %) и мочевой кислоты (у 33 %)в сыворотке крови. Эти изменения носили характер тенденции [80, 81].</p><p>I. K. Wang и др. [<xref ref-type="bibr" rid="cit82">82</xref>] провели рандомизирован­ное двойное слепое плацебо-контролируемое ис­следование, включавшее 39 больных, получавших заместительную почечную терапию перитонеальным диализом. Пациенты в течение 6 мес прини­мали смесь пробиотиков (Bifobacterium bifidum, Bifidobacterium catenulatum, Bifidobacterium longum, Lactobacillus plantarum). Выявлено зна­чительное снижение содержания эндотоксина и провоспалительных цитокинов, а также увеличе­ние уровня противовоспалительного интерлейки­на-10 в сыворотке крови и сохранение остаточной функции почек на фоне 6-месячной пробиотиче­ской терапии.</p><p> </p><table-wrap id="table-5"><caption><p>Таблица 5 / Table 5</p><p>Экспериментальные и клинические исследования с использованием пре- и пробиотических составов при ХБП</p><p>Experimental and clinical studies using pre- and probiotic formulations in CKD</p></caption><table><tbody><tr><th>№
пп</th><th>Авторы</th><th>Тип вмешательства</th><th>Профиль пациентов</th><th>Результат</th></tr><tr><td>1</td><td>Hida M. et al., 1996 [88]</td><td>Лебенин</td><td>25 больных на ГД</td><td>Снижение индикана в фекалиях и сыворотке крови. Снижение п-крезола в фекалиях</td></tr><tr><td>2</td><td>Simenhoff M.L. et al., 1996 [78]</td><td>Lactobacillus acidophilus</td><td>8 больных на ГД</td><td>Снижение диметиламина и нитрозодиметиламина в сыворотке крови</td></tr><tr><td>3</td><td>Prakash S., Chang TM., 1996 [89]</td><td>Генетически модифициро­ванная E.coli</td><td>Нефрэктомированные
крысы</td><td>Снижение мочевины в сыворотке крови</td></tr><tr><td>4</td><td>Swanson K.S. et al., 2002 [90]</td><td>Фруктоолигосахариды или Lactobacillus acidophilus</td><td>Здоровые лица n=68</td><td>Уменьшение количества уремических токсинов в фекалиях при приеме фруктоолигосахаридов и уве­личение при приеме Lactobacillus acidophilus</td></tr><tr><td>5</td><td>Ando Y et al., 2003 [91]</td><td>Bifidobacterium longum</td><td>27 больных с ХБП</td><td>Замедление прогрессирования ХБП у пациентов с уровнем в сыворотке крови креатинина &gt;4 мг/дл</td></tr><tr><td>6</td><td>Takayama F. et al., 2003 [92]</td><td>Bifidobacterium longum</td><td>22 больных на ГД</td><td>Снижение индоксилсульфата в сыворотке крови</td></tr><tr><td>7</td><td>Ranganathan N. et al., 2005 [79]</td><td>Различные комбинации про­биотиков</td><td>Нефрэктомированные
крысы</td><td>Увеличение продолжительности жизни. Снижение уровня азота мочевины в сыворотке крови</td></tr><tr><td>8</td><td>Taki K. et al., 2005 [93]</td><td>Bifidobacterium longum</td><td>27 больных на ГД</td><td>Снижение в сыворотке крови индоксилсульфата, гомоцистеина и триглицеридов</td></tr><tr><td>9</td><td>de Preter V et al., 2008 [94]</td><td>Олигофруктоза-инулин</td><td>5 здоровых добро­вольцев</td><td>Уменьшение выведения п-крезола с мочой</td></tr><tr><td>10</td><td>Ranganathan N. et al., 2009 [80]</td><td>Streptococcus thermophilus, Lactobacillus acidophilus, Bifidobacterium. longum</td><td>16 больных с ХБП С3-4 стадии</td><td>Снижение концентрации азота мочевины, мочевой кислоты.
Повышение качества жизни</td></tr><tr><td>11</td><td>Ranganathan N. et al., 2010 [81]</td><td>Streptococcus thermophilus, Lactobacillus acidophilus, Bifidobacterium. longum</td><td>46 больных с ХБП С3-4 стадии</td><td>Снижение концентрации азота мочевины. Повышение качества жизни</td></tr><tr><td>12</td><td>Meijers B.K. et al., 2010 [55]</td><td>Олигофруктоза-инулин</td><td>22 больных на ГД</td><td>Снижение концентрации п-крезола в сыворотке крови</td></tr><tr><td>13</td><td>Nakabayashi I. et al., 2011 [95]</td><td>Lactobacillus casei shirota, Bifidobacterium breve Yakult, галактоолигосахариды</td><td>9 больных на ГД</td><td>Снижение в сыворотке крови концентрации п-крезола</td></tr><tr><td>14</td><td>Ogawa T et al., 2012 [96]</td><td>Bifidobacterium longum и оли­госахариды</td><td>15 больных на ГД</td><td>Снижение концентрации неорганического фосфата в сыворотке крови</td></tr><tr><td>15</td><td>Alatriste M.P.V. et al., 2014 [97]</td><td>Lactobacillus casei shirota</td><td>30 больных с ХБП С3-4</td><td>Снижение концентрации мочевины в сыворотке крови</td></tr><tr><td>16</td><td>Cruz-Mora J. et al., 2014 [98]</td><td>Lactobacillus acidophilus, Bifidobacterium lactis и инулин</td><td>18 больных на ГД</td><td>Увеличение числа бифидобактерий и снижение числа лактобактерий в фекалиях</td></tr><tr><td>17</td><td>Guida B. et al, 2014 [99]</td><td>Lactobacillus plantarum, Lac­tobacillus casei subsp. rham- nosus, Lactobacillus gasseri, Bifidobacterium infantis, Bifi­dobacterium longum, Lactoba­cillus acidophilus, Lactobacillus salivarius, Lactobacillus spo- rogenes, Streptococcus ther- mophilus, инулин и крахмал тапиоки</td><td>30 больных с ХБП С3-4 стадии</td><td>Снижение концентрации п-крезола в сыворотке крови</td></tr><tr><td>18</td><td>Natarajan R. et al., 2014 [100]</td><td>Streptococcus thermophilus Lactobacillus acidophilus, Bifi­dobacterium longum</td><td>22 больных на ГД</td><td>Нет улучшения качества жизни, тенденция к сниже­нию индоксилглюкуронида, СРБ и лейкоцитоза</td></tr><tr><td>19</td><td>Wang I.-K. et al., 2015 [82]</td><td>Bifidobacterium bifidum, Bi­fidobacterium catenulatum, Bifidobacterium longum, Lac­tobacillus plantarum</td><td>39 больных на перито­неальном диализе</td><td>Снижение концентрации в сыворотке крови TNF-α, IL-5, IL-6 и эндотоксина
Повышение концентрации в сыворотке крови IL-10 Сохранение остаточной функции почек</td></tr><tr><td>20</td><td>Viramontes-Horner D. et al., 2015 [101]</td><td>Lactobacillus acidophilus, Bi­fidobacterium lactis, инулин</td><td>42 больных на ГД</td><td>Тенденция к снижению концентрации в сыворотке крови to diminish levels СРБ, TNF-α. Улучшение ЖКТ- симптомов</td></tr><tr><td>21</td><td>Pavan M., 2016 [102]</td><td>Streptococcus thermophiles, Lactobacillus acidophilus, Bifidobacterium longum, фрук­тоолигосахариды</td><td>24 больных с ХБП С3-4 стадии</td><td>Замедление прогрессирования ХБП</td></tr><tr><td>22</td><td>Rossi M. et al., 2016 [83]</td><td>Lactobacillus, bifidobacte­ria, Streptococcus generates, inulin, Fructooligosaccharides, galactooligosaccharides</td><td>37 больных с ХБП С4-5 стадии</td><td>Снижение концентрации в сыворотке крови п-крезилсульфата, увеличение числа бифидобак­терий и снижение числа руминококков в фекалиях. Нет изменений показателей воспалительного и оксидативного стресса. Тенденция к увеличению концентрации альбумина в сыворотке крови</td></tr></tbody></table></table-wrap><p>Однако не все исследователи столь оптими­стичны. Ряд авторов весьма осторожно относятся к идее применения пробиотиков при ХБП. Возра­жения сводятся к нескольким обстоятельствам:</p><p>Учитывая полярность мнений, нам предста­вилось целесообразным ознакомить читателя (табл. 5) с результатами применения пробиотиков при ХБП.</p></sec><sec><title>СИНБИОТИКИ</title><p>Несомненный интерес в рамках обсуждаемой темы вызывает новая группа средств - синбиотиков. Это продукты, которые содержат одновре­менно пребиотики и пробиотики. В аптечной сети они представлены следующими препаратами:</p><p>Известны результаты трёх исследований при­менения симбиотического вмешательства у паци­ентов с ХБП.</p><p>Наиболее представительным из них, по наше­му мнению, является исследование «SYNERGY» [<xref ref-type="bibr" rid="cit83">83</xref>]. Дизайн исследования спланирован как од­ноцентровое двойное слепое рандомизирован­ное перекрестное исследование. Целью явилось изучение эффективности применения симбиотиков для уменьшения микробного производства п-крезола и индоксилсульфата путём изменения формы и функции микробиоты кишечника. От­бор пациентов был произведён в узком диапазо­не СКФ с исключением лиц, перенёсших транс­плантацию почки, оперативное вмешательство</p><p>на желудочно-кишечном тракте, с заболеваними кишечника, включая синдром раздражённой киш­ки, предшествующее применение пробиотиков и антибиотиков. Дизайн исследования состоял из 2-недельного вводного периода, во время которо­го проводили занятия с диетологом, направленные на стандартизацию потребления белка и клетчат­ки. Для уменьшения влияния микронутриентов в день, предшествующий забору крови, пациентам предоставляли стандартный ужин. Рандомизация производилась посредством специальной ком­пьютерной программы внешним консультантом с защищённого сервера. Приём симбиотика/плаце- бо проводили в течение 6 нед с последующим за­бором крови, затем следовал 4-недельный период «вымывания», когда пациенты, находясь на стан­дартной диете, не получали симбиотик/плацебо с забором крови в конце данного периода, затем повторный 6-недельный курс приёма симбиотик/ плацебо с контрольным забором крови. Допол­нительно определяли концентрации воспали­тельных биомаркёров, показатели оксидативного стресса, профиль микробиоты стула и показате­ли общего здоровья. Пребиотический компонент симбиотической терапии состоял из комбинации высокомолекулярного инулина, фруктоолигосахаридов, галактоолигосахаридов. Пробиотический компонент включал девять различных штаммов Laktobacillus, Bifidobacteria и Streptococcus. Пребиотик был представлен в виде порошка, проби­отик в виде капсулы. В аналогичном виде пред­ставлено плацебо.</p><p>В результате исследования было установлено, что симбиотическая терапия достоверно снижала концентрацию п-крезола в сыворотке крови, но не влияла на индоксилсульфат. Авторы отметили максимальную эффективность применения сим- биотиков при меньшей выраженности дисфунк­ции почек. Зарегистрирован существенный сдвиг в составе микробиоты стула с 5-кратным увели­чением количества бифидобактерий, снижение количества руминококков в фекалиях. Причём достигнутое изменение микробиоты сохранялось только на фоне терапии симбиотиком. Авторы поддерживают высказанную ранее гипотезу о том, что Bifidobacterium spp. регулирует рост бак­териальных видов с высокими ферментативными способностями для продуцирования индоксил сульфата и п-крезола [<xref ref-type="bibr" rid="cit12">12</xref>]. В кратком виде суть ги­потезы в том, что способность симбиотиков сни­жать концентрации индоксилсульфата и п-крезола зависит от содержания в них бифидобактерий.</p><p>В двух других исследованиях [95, 99] эффек­тивности применения симбиотиков также заре­гистрировано значимое снижение концентрации п-крезола в сыворотке крови у пациентов с ХБП. Авторы считают, что поскольку высокие концен­трации п-крезола в сыворотке крови на ранних стадиях ХБП являются достоверным признаком более быстрого снижения дисфункции почек, то применение симбиотиков может способствовать замедлению темпов прогрессирования ХБП.</p><p>Основным недостатком про- и симбиотической терапии является отсутствие устойчивой выжи­ваемости введенных микробов в дисбиотической среде толстой кишки. Данное мнение разделяют все авторы. Далеко не во всех публикациях содер­жатся сведения о переносимости симбиотической терапии, о возможных её взаимовлияниях с лекарственной терапией и, наконец, об возможных осложнениях.</p></sec><sec><title>ЗАКЛЮЧЕНИЕ</title><p>Таким образом, данные литературных источ­ников, касающихся применения пребиотиков, пробиотиков и синбиотиков, свидетельствуют о том, что, несмотря на определённые успехи в целенаправленной разработке и создании новых препаратов, решение вопроса ещё весьма далеко от завершения. Тем не менее, следует отметить достаточно глубокое изучение патофизиологиче­ских звеньев взаимоотношений микробиоты и хо­зяина с нарушением функции почек. Можно счи­тать установленным, что чрезмерное поступление мочевины в пищеварительный тракт стимулирует рост числа бактерий с уреазной активностью, что приводит к избыточной продукции аммиака и рас­творимых солей аммония в толстой кишке и, соот­ветственно, к сдвигу рН кишечного содержимого в щелочную сторону, а также угнетению бакте­рий, производящих КЦЖК, являющиеся энерге­тическим субстратом колоноцитов. Практически все вышеперечисленные факторы потенциируют эндотоксикоз, приводя к повышению проницае­мости кишечного барьера для микробов и проду­цируемых им веществ.</p><p>К сожалению, качество и доказательная база многих исследований являются дискуссионны­ми, а результаты - противоречивыми. Однако это не означает, что попытки воздействия на микро­биоту кишечника при ХБП бессмысленны. Тем более, что ряд авторов получили вполне оптими­стичные результаты. Следовательно, можно го­ворить о перспективности данного направления с уровнем доказательств 2 и силы рекомендаций на уровне C-D. Необходимы хорошо продуман­ные, достаточно мощные рандомизированные плацебо-контролируемые испытания, выполнен­ные в сопоставимых группах, например, по выра­женности дисфункции почек, в стандартизован­ных условиях потребления пищи, комплайнса и других влияющих факторах.</p></sec></body><back><ref-list><title>References</title><ref id="cit1"><label>1</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Ramezani A, Raj DS. The gut microbiome, kidney disease, and targeted interventions. J Am Soc Nephrol 2014; 25: 657–670 Doi:10.1681/ASN.2013080905</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Ramezani A, Raj DS. The gut microbiome, kidney disease, and targeted interventions. J Am Soc Nephrol 2014; 25: 657–670 Doi:10.1681/ASN.2013080905</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit2"><label>2</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Vaziri ND. Effect of Synbiotic Therapy on Gut-Derived Uremic Toxins and the Intestinal Microbiome in Patients with CKD. Clin J Am Soc Nephrol 2016; 11(2): 199–201. Doi: 10.2215/CJN.13631215</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Vaziri ND. Effect of Synbiotic Therapy on Gut-Derived Uremic Toxins and the Intestinal Microbiome in Patients with CKD. Clin J Am Soc Nephrol 2016; 11(2): 199–201. Doi: 10.2215/CJN.13631215</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit3"><label>3</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Wu MJ, Chang CS, ChengCH et al. Colonic transit time in long-term dialysis patients. Am J Kidney Dis 2004; 44: 322–327</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Wu MJ, Chang CS, ChengCH et al. Colonic transit time in long-term dialysis patients. Am J Kidney Dis 2004; 44: 322–327</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit4"><label>4</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Guldris SC, Parra EG, Amenos AC. Gut microbiota in chronic kidney disease. Nefrología 2017; 37 (1-2): 9–19 Doi: 10.1016/j.nefro.2016.05.008</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Guldris SC, Parra EG, Amenos AC. Gut microbiota in chronic kidney disease. Nefrología 2017; 37 (1-2): 9–19 Doi: 10.1016/j.nefro.2016.05.008</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit5"><label>5</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Castillo-Rodriguez E, Fernandez-Prado R, Esteras R et al. Impact of Altered Intestinal Microbiota on Chronic Kidney Disease Progression. Toxins (Basel) 2018; 10 (7): 300. Doi:10.3390/toxins10070300</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Castillo-Rodriguez E, Fernandez-Prado R, Esteras R et al. Impact of Altered Intestinal Microbiota on Chronic Kidney Disease Progression. Toxins (Basel) 2018; 10 (7): 300. Doi:10.3390/toxins10070300</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit6"><label>6</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Koppe L, Fouque D, Soulage CO. The Role of Gut Microbiota and Diet on Uremic Retention Solutes Production in the Context of Chronic Kidney Disease. Toxins (Basel) 2018;10(4):155. Doi:10.3390/toxins10040155</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Koppe L, Fouque D, Soulage CO. The Role of Gut Microbiota and Diet on Uremic Retention Solutes Production in the Context of Chronic Kidney Disease. Toxins (Basel) 2018;10(4):155. Doi:10.3390/toxins10040155</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit7"><label>7</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Jakobsson HE, Jemberg C, Andersson AF et al. Short-term antibiotic treatment has differing long-term impacts on the human throat and gut microbiome. PLoS ONE 2010; 5: e9836. Doi.org/10.1371/journal.pone.0009836</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Jakobsson HE, Jemberg C, Andersson AF et al. Short-term antibiotic treatment has differing long-term impacts on the human throat and gut microbiome. PLoS ONE 2010; 5: e9836. Doi.org/10.1371/journal.pone.0009836</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit8"><label>8</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Jemberg C, Lofmark S, Edlund C, Jansson JK. Long-term impact of antibiotic exposure on the human intestinal microbiota. Microbiology 2010; 156: 3216–3223. Doi: 10.1099/mic.0.040618-0</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Jemberg C, Lofmark S, Edlund C, Jansson JK. Long-term impact of antibiotic exposure on the human intestinal microbiota. Microbiology 2010; 156: 3216–3223. Doi: 10.1099/mic.0.040618-0</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit9"><label>9</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Aron-Wisnewsky JA, Clement K. The gut microbiome, diet, and links to cardiometabolic and chronic disorders. Nat Rev Nephrol 2016;12: 169–181. Doi: 10.1038/nrneph.2015</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Aron-Wisnewsky JA, Clement K. The gut microbiome, diet, and links to cardiometabolic and chronic disorders. Nat Rev Nephrol 2016;12: 169–181. Doi: 10.1038/nrneph.2015</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit10"><label>10</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Mafra D, Lobo JC, Barros F et al. Role of altered intestinal microbiota in systemic inflammation and cardiovascular disease in chronic kidney disease. Future Microbiol 2014;9: 399–410. Doi.org/10.2217/fmb.13.165.10.2217/fmb.13.165</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Mafra D, Lobo JC, Barros F et al. Role of altered intestinal microbiota in systemic inflammation and cardiovascular disease in chronic kidney disease. Future Microbiol 2014;9: 399–410. Doi.org/10.2217/fmb.13.165.10.2217/fmb.13.165</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit11"><label>11</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Coppa GV, Bruni S, Morelli L et al. The first prebiotics in humans: human milk oligosaccharides. J Clin Gastroenterol 2004; 38, suppl. 6: S80–S83</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Coppa GV, Bruni S, Morelli L et al. The first prebiotics in humans: human milk oligosaccharides. J Clin Gastroenterol 2004; 38, suppl. 6: S80–S83</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit12"><label>12</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Gibson GR, Roberfroid MB. Dietary modulation of the colonic microbiota: introducing the concept of prebiotics. J Nutr 1995;125:1401–1412</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Gibson GR, Roberfroid MB. Dietary modulation of the colonic microbiota: introducing the concept of prebiotics. J Nutr 1995;125:1401–1412</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit13"><label>13</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Bindels LB, Delzenne NM, Cani PD et al. Towards a more comprehensive concept for prebiotics. Nat Rev Gastroenterol Hepatol 2015; 12: 303–310</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Bindels LB, Delzenne NM, Cani PD et al. Towards a more comprehensive concept for prebiotics. Nat Rev Gastroenterol Hepatol 2015; 12: 303–310</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit14"><label>14</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Louis P, Flint HJ, Michel C. How to Manipulate the Microbiota: Prebiotics. Adv Exp Med Biol 2016; 902: 119–142. Doi: 10.1007/978-3-319-31248-4_9</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Louis P, Flint HJ, Michel C. How to Manipulate the Microbiota: Prebiotics. Adv Exp Med Biol 2016; 902: 119–142. Doi: 10.1007/978-3-319-31248-4_9</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit15"><label>15</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Singla V, Chakkaravarthi S. Applications of prebiotics in food industry: A review. Food Sci Technol Int 2017 Dec; 23(8): 649–667. Doi: 10.1177/1082013217721769</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Singla V, Chakkaravarthi S. Applications of prebiotics in food industry: A review. Food Sci Technol Int 2017 Dec; 23(8): 649–667. Doi: 10.1177/1082013217721769</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit16"><label>16</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Reid G, Sanders M, Gaskins H. New scientific paradigms for probiotics and prebiotics. J Clin 2003;37(2):105–118</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Reid G, Sanders M, Gaskins H. New scientific paradigms for probiotics and prebiotics. J Clin 2003;37(2):105–118</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit17"><label>17</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Gibson GR, Probert HM, Van Loo J et al. Dietary modulation of the human colonic microbiota: updating the concept of prebiotics. Nutr Res Rev 2004;17(2):259–275</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Gibson GR, Probert HM, Van Loo J et al. Dietary modulation of the human colonic microbiota: updating the concept of prebiotics. Nutr Res Rev 2004;17(2):259–275</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit18"><label>18</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Pineiro M, Asp N-G, Reid G et al. FAO technical meeting on prebiotics. J Clin Gastroenterol 2008;42: S156–159</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Pineiro M, Asp N-G, Reid G et al. FAO technical meeting on prebiotics. J Clin Gastroenterol 2008;42: S156–159</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit19"><label>19</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Gibson GR, Scott KP, Rastall RA et al. Dietary prebiotics: current status and new definition. Food Sci Technol Bull Funct Foods 2010;7(1):1–19</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Gibson GR, Scott KP, Rastall RA et al. Dietary prebiotics: current status and new definition. Food Sci Technol Bull Funct Foods 2010;7(1):1–19</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit20"><label>20</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Bird AR, Conlon MA, Christophersen CT et al. Resistant starch, large bowel fermentation and a broader perspective of prebiotics and probiotics. Benef Microbes 2010; 1: 423–431. Doi: 10.3920/BM2010.0041</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Bird AR, Conlon MA, Christophersen CT et al. Resistant starch, large bowel fermentation and a broader perspective of prebiotics and probiotics. Benef Microbes 2010; 1: 423–431. Doi: 10.3920/BM2010.0041</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit21"><label>21</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Hutkins RW, Krumbeck JA, Bindels LB et al. Prebiotics: why definitions matter. Curr Opin Biotechnol 2016; 37: 1–7</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Hutkins RW, Krumbeck JA, Bindels LB et al. Prebiotics: why definitions matter. Curr Opin Biotechnol 2016; 37: 1–7</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit22"><label>22</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Тарасенко НА, Филиппова ЕВ. Кратко о пребиотиках: история, классификация, получение, применение. Фундаментальные исследования; 2014; (6-1): 45–48</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Тарасенко НА, Филиппова ЕВ. Кратко о пребиотиках: история, классификация, получение, применение. Фундаментальные исследования; 2014; (6-1): 45–48</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit23"><label>23</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">United States Food and Drug Administration. Guidance for Industry on Center for Drug Evaluation and Research (CDER) Center for Devices and Radiological Health (CDRH) Center for Food Safety and Applied Nutrition (CFSAN). Off Commun Training, Manuf Assist 2007</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">United States Food and Drug Administration. Guidance for Industry on Center for Drug Evaluation and Research (CDER) Center for Devices and Radiological Health (CDRH) Center for Food Safety and Applied Nutrition (CFSAN). Off Commun Training, Manuf Assist 2007</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit24"><label>24</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">van Loveren H, Sanz Y, Salminen S. Health claims in Europe: probiotics and prebiotics as case examples. Annu Rev Food Sci Tech 2012;3:247–261</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">van Loveren H, Sanz Y, Salminen S. Health claims in Europe: probiotics and prebiotics as case examples. Annu Rev Food Sci Tech 2012;3:247–261</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit25"><label>25</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">de Vrese M, Schrezenmeir J. Probiotics, prebiotics, and synbiotics. Adv Biochem Eng Biotechnol 2008; 111: 1–66</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">de Vrese M, Schrezenmeir J. Probiotics, prebiotics, and synbiotics. Adv Biochem Eng Biotechnol 2008; 111: 1–66</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit26"><label>26</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Carlson JL, Erickson JM, Lloyd BB, Slavin JL. Health Effects and Sources of Prebiotic Dietary Fiber. Curr Dev Nutr 2018; 2: nzy005. Doi: 10.1093/cdn/nzy005</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Carlson JL, Erickson JM, Lloyd BB, Slavin JL. Health Effects and Sources of Prebiotic Dietary Fiber. Curr Dev Nutr 2018; 2: nzy005. Doi: 10.1093/cdn/nzy005</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit27"><label>27</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Windey K, De Preter V, Verbeke K. Relevance of protein fermentation to gut health. Mol Nutr Food Res 2012; 56(1):184–196. Doi: 10.1002/mnfr.201100542</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Windey K, De Preter V, Verbeke K. Relevance of protein fermentation to gut health. Mol Nutr Food Res 2012; 56(1):184–196. Doi: 10.1002/mnfr.201100542</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit28"><label>28</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">De Preter V, Vanhoutte T, Huys G et al. Effect of lactulose and Saccharomyces boulardii administration on the colonic urea-nitrogen metabolism and the bifidobacteria concentration in healthy human subjects. Aliment Pharmacol Ther 2006;23(7): 963–974</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">De Preter V, Vanhoutte T, Huys G et al. Effect of lactulose and Saccharomyces boulardii administration on the colonic urea-nitrogen metabolism and the bifidobacteria concentration in healthy human subjects. Aliment Pharmacol Ther 2006;23(7): 963–974</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit29"><label>29</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">De Preter V, Coopmans T, Rutgeerts P, Verbeke K. Influence of long-term administration of lactulose and Saccharomyces boulardii on the colonic generation of phenolic compounds in healthy human subjects. J Am Coll Nutr 2006;25(6):541–549</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">De Preter V, Coopmans T, Rutgeerts P, Verbeke K. Influence of long-term administration of lactulose and Saccharomyces boulardii on the colonic generation of phenolic compounds in healthy human subjects. J Am Coll Nutr 2006;25(6):541–549</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit30"><label>30</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Geboes KP, De Hertogh G, De Preter V et al. The influence of inulin on the absorption of nitrogen and the production of metabolites of protein fermentation in the colon. Br J Nutr 2006; 96(6):1078–1086</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Geboes KP, De Hertogh G, De Preter V et al. The influence of inulin on the absorption of nitrogen and the production of metabolites of protein fermentation in the colon. Br J Nutr 2006; 96(6):1078–1086</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit31"><label>31</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Gibson GR, McCartney AL, Rastall RA. Prebiotics and resistance to gastrointestinal infections. Br J Nutr 2005; 93(Suppl 1): S31–34</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Gibson GR, McCartney AL, Rastall RA. Prebiotics and resistance to gastrointestinal infections. Br J Nutr 2005; 93(Suppl 1): S31–34</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit32"><label>32</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Husby S, Jensenius JC, Svehag SE. Passage of undegraded dietary antigen in to the blood of adults. Quantification, estimarion of size distribution, and relation of antibodies. Scand J Immunol 1985; 22:83–92</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Husby S, Jensenius JC, Svehag SE. Passage of undegraded dietary antigen in to the blood of adults. Quantification, estimarion of size distribution, and relation of antibodies. Scand J Immunol 1985; 22:83–92</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit33"><label>33</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Shimizu M. Interaction between food substances and the intestinal epithelium. Biosci Biotechnol Biochem 2010; 74: 232–241</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Shimizu M. Interaction between food substances and the intestinal epithelium. Biosci Biotechnol Biochem 2010; 74: 232–241</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit34"><label>34</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Turner JR. Intestinal mucosal barrier function in health and disease. Nat Rev Immunol 2009 Nov; 9(11):799–809. Doi: 10.1038/nri2653</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Turner JR. Intestinal mucosal barrier function in health and disease. Nat Rev Immunol 2009 Nov; 9(11):799–809. Doi: 10.1038/nri2653</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit35"><label>35</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Patel S, Behara R, Swanson GR et al. Alcohol and the intestine. Biomolecules 2015; 5:2573–2588</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Patel S, Behara R, Swanson GR et al. Alcohol and the intestine. Biomolecules 2015; 5:2573–2588</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit36"><label>36</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Raybould HE. Gut microbiota, epithelial function and derangements in obesity. J Physiol 2012; 590:441–446</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Raybould HE. Gut microbiota, epithelial function and derangements in obesity. J Physiol 2012; 590:441–446</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit37"><label>37</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Suzuki T, Yoshida S, Hara H. Physiological concentrations of short-chain fatty acids immediately suppress colonic epithelial permeability. Br J Nutr 2008;100(2):297–305</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Suzuki T, Yoshida S, Hara H. Physiological concentrations of short-chain fatty acids immediately suppress colonic epithelial permeability. Br J Nutr 2008;100(2):297–305</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit38"><label>38</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Cani PD, Possemiers S, Van de Wiele T et al. Changes in gut microbiota control inflammation in obese mice through a mechanism involving GLP-2-driven improvement of gut permeability. Gut 2009;58(8):1091–1103</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Cani PD, Possemiers S, Van de Wiele T et al. Changes in gut microbiota control inflammation in obese mice through a mechanism involving GLP-2-driven improvement of gut permeability. Gut 2009;58(8):1091–1103</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit39"><label>39</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Wong JMW, de Souza R, Kendall CWC et al. Ovid: colonic health: fermentation and short chain fatty acids. Clin Gastroenterol 2006;40(3):235–243</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Wong JMW, de Souza R, Kendall CWC et al. Ovid: colonic health: fermentation and short chain fatty acids. Clin Gastroenterol 2006;40(3):235–243</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit40"><label>40</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Machiels K, Joossens M, Sabino J et al. A decrease of the butyrate-producing species Roseburia hominis and Faecalibacterium prausnitzii defines dysbiosis in patients with ulcerative colitis. Gut 2014;63(8):1275–1283</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Machiels K, Joossens M, Sabino J et al. A decrease of the butyrate-producing species Roseburia hominis and Faecalibacterium prausnitzii defines dysbiosis in patients with ulcerative colitis. Gut 2014;63(8):1275–1283</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit41"><label>41</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Carlson J, Esparza J, Swan J et al. In vitro analysis of partially hydrolyzed guar gum fermentation differences between six individuals. Food Funct 2016;7(4):1833–1838</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Carlson J, Esparza J, Swan J et al. In vitro analysis of partially hydrolyzed guar gum fermentation differences between six individuals. Food Funct 2016;7(4):1833–1838</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit42"><label>42</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Cashman KD. Calcium intake, calcium bioavailability and bone health. Br J Nutr 2002;87 (Suppl 2): S169–177</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Cashman KD. Calcium intake, calcium bioavailability and bone health. Br J Nutr 2002;87 (Suppl 2): S169–177</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit43"><label>43</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Whisner CM, Martin BR, Schoterman MHC et al. Galacto oligosaccharides increase calcium absorption and gut bifidobacteria in young girls: a double-blind cross-over trial. Br J Nutr 2013;110(7): 1292–1303. Doi: 10.1017/S000711451300055X</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Whisner CM, Martin BR, Schoterman MHC et al. Galacto oligosaccharides increase calcium absorption and gut bifidobacteria in young girls: a double-blind cross-over trial. Br J Nutr 2013;110(7): 1292–1303. Doi: 10.1017/S000711451300055X</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit44"><label>44</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Ellegard L, Andersson H, Bosaeus I. Inulin and oligofructose do not influence the absorption of cholesterol, or the excretion of cholesterol, Ca, Mg, Zn, Fe, or bile acids but increases energy excretion in ileostomy subjects. Eur J Clin Nutr 1997;51(1):1–5</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Ellegard L, Andersson H, Bosaeus I. Inulin and oligofructose do not influence the absorption of cholesterol, or the excretion of cholesterol, Ca, Mg, Zn, Fe, or bile acids but increases energy excretion in ileostomy subjects. Eur J Clin Nutr 1997;51(1):1–5</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit45"><label>45</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">van den Heuvel EG, Schoterman MH, Muijs T. Transgalactooligosaccharides stimulate calcium absorption in postmenopausal women. J Nutr 2000;130(12):2938–2942</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">van den Heuvel EG, Schoterman MH, Muijs T. Transgalactooligosaccharides stimulate calcium absorption in postmenopausal women. J Nutr 2000;130(12):2938–2942</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit46"><label>46</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Tahiri M, Tressol JC, Arnaud J et al. Effect of short-chain fructooligosaccharides on intestinal calcium absorption and calcium status in postmenopausal women: a stable-isotope study. Am J Clin Nutr 2003;77(2):449–457</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Tahiri M, Tressol JC, Arnaud J et al. Effect of short-chain fructooligosaccharides on intestinal calcium absorption and calcium status in postmenopausal women: a stable-isotope study. Am J Clin Nutr 2003;77(2):449–457</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit47"><label>47</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Lopez-Huertas E, Teucher B, Boza JJ et al. Absorption of calcium from milks enriched with fructo-oligosaccharides, caseinophosphopeptides, tricalcium phosphate, and milk solids. Am J Clin Nutr 2006;83(2):310–316</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Lopez-Huertas E, Teucher B, Boza JJ et al. Absorption of calcium from milks enriched with fructo-oligosaccharides, caseinophosphopeptides, tricalcium phosphate, and milk solids. Am J Clin Nutr 2006;83(2):310–316</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit48"><label>48</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">van den Heuvel EG, Schaafsma G, Muys T et al. Nondigestible oligosaccharides do not interfere with calcium and nonheme-iron absorption in young, healthy men. Am J Clin Nutr 1998;67(3): 445–451</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">van den Heuvel EG, Schaafsma G, Muys T et al. Nondigestible oligosaccharides do not interfere with calcium and nonheme-iron absorption in young, healthy men. Am J Clin Nutr 1998;67(3): 445–451</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit49"><label>49</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Tahiri M, Tressol JC, Arnaud J et al. Five-week intake of short-chain fructo-oligosaccharides increases intestinal absorption and status of magnesium in postmenopausal women. J Bone Miner Res 2001;16(11):2152–2160</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Tahiri M, Tressol JC, Arnaud J et al. Five-week intake of short-chain fructo-oligosaccharides increases intestinal absorption and status of magnesium in postmenopausal women. J Bone Miner Res 2001;16(11):2152–2160</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit50"><label>50</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Griffin I, Davila P, Abrams S. Non-digestible oligosaccharides and calcium absorption in girls with adequate calcium intakes. Br J Nutr 2002;87(Suppl 2):S187–191</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Griffin I, Davila P, Abrams S. Non-digestible oligosaccharides and calcium absorption in girls with adequate calcium intakes. Br J Nutr 2002;87(Suppl 2):S187–191</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit51"><label>51</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Abrams S, Griffin I, Hawthorne K. A combination of prebiotic short- and long-chain inulin-type fructans enhances calcium absorption and bone mineralization in young adolescents. Am J Clin Nutr 2005;82(2):471–476</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Abrams S, Griffin I, Hawthorne K. A combination of prebiotic short- and long-chain inulin-type fructans enhances calcium absorption and bone mineralization in young adolescents. Am J Clin Nutr 2005;82(2):471–476</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit52"><label>52</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Global Market Insights. Prebiotics market size by ingredient (inulin, GOS, FOS, MOS), by application (animal feed, food &amp; beverages [dairy, cereals, baked goods, fermented meat, dry foods], dietary supplements [food, nutrition, infant formulations]), industry analysis report, regional outlook, application potential, price trends, competitive market share &amp; forecast, 2017–2024 [Internet]. 2017. Available from: https://www.gminsights.com/industry-analysis/prebiotics-market</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Global Market Insights. Prebiotics market size by ingredient (inulin, GOS, FOS, MOS), by application (animal feed, food &amp; beverages [dairy, cereals, baked goods, fermented meat, dry foods], dietary supplements [food, nutrition, infant formulations]), industry analysis report, regional outlook, application potential, price trends, competitive market share &amp; forecast, 2017–2024 [Internet]. 2017. Available from: https://www.gminsights.com/industry-analysis/prebiotics-market</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit53"><label>53</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">De Preter V, Vanhoutte T, Huys G et al. Effects of Lactobacillus casei Shirota, Bifidobacterium breve, and oligofructoseenriched inulin on colonic nitrogen–protein metabolism in healthy humans. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol 2007; 292: G358–G368</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">De Preter V, Vanhoutte T, Huys G et al. Effects of Lactobacillus casei Shirota, Bifidobacterium breve, and oligofructoseenriched inulin on colonic nitrogen–protein metabolism in healthy humans. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol 2007; 292: G358–G368</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit54"><label>54</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Patel K, Luo F, Recht N et al. A vegetarian diet reduces production of colon-derived uremic solutes [abstract]. J Am Soc Nephrol 2008; 19: 488A</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Patel K, Luo F, Recht N et al. A vegetarian diet reduces production of colon-derived uremic solutes [abstract]. J Am Soc Nephrol 2008; 19: 488A</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit55"><label>55</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Meijers BK, De Preter V, Verbeke K et al. P-Cresyl sulfate serum concentrations in haemodialysis patients are reduced by the prebiotic oligofructose-enriched inulin. Nephrol Dial Transplant 2010; 25: 219–224</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Meijers BK, De Preter V, Verbeke K et al. P-Cresyl sulfate serum concentrations in haemodialysis patients are reduced by the prebiotic oligofructose-enriched inulin. Nephrol Dial Transplant 2010; 25: 219–224</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit56"><label>56</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Bliss DZ, Stein TP, Schleifer CR, Settle RG. Supplementation with gum arabic fiber increases fecal nitrogen excretion and lowers serum urea nitrogen concentration in chronic renal failure patients consuming a low-protein diet. Am J Clin Nutr 1996; 63: 392–391</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Bliss DZ, Stein TP, Schleifer CR, Settle RG. Supplementation with gum arabic fiber increases fecal nitrogen excretion and lowers serum urea nitrogen concentration in chronic renal failure patients consuming a low-protein diet. Am J Clin Nutr 1996; 63: 392–391</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit57"><label>57</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Sirich TL, Plummer NS, Gardner CD et al. Effect of increasing dietary fiber on plasma levels of colon-derived solutes in hemodialysis patients. Clin J Am Soc Nephrol 2014;9: 1603–1610. Doi: 10.2215/CJN.00490114</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Sirich TL, Plummer NS, Gardner CD et al. Effect of increasing dietary fiber on plasma levels of colon-derived solutes in hemodialysis patients. Clin J Am Soc Nephrol 2014;9: 1603–1610. Doi: 10.2215/CJN.00490114</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit58"><label>58</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Vaziri ND, Liu SM, Lau WL et al. High amylose resistant starch diet ameliorates oxidative stress, inflammation, and progression of chronic kidney disease. PLoS One 2014;9: e114881. Doi.org/10.1371/journal.pone.0114881</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Vaziri ND, Liu SM, Lau WL et al. High amylose resistant starch diet ameliorates oxidative stress, inflammation, and progression of chronic kidney disease. PLoS One 2014;9: e114881. Doi.org/10.1371/journal.pone.0114881</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit59"><label>59</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Vaziri ND, Zhao Y, Pahl MV. Altered intestinal microbial flora and impaired epithelial barrier structure and function in CKD: the nature, mechanisms, consequences and potential treatment. Nephrology Dialysis Transplantation 2016;31(5):737–746. Doi: 10.1093/ndt/gfv095. Doi: 10.1093/ndt/gfv095</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Vaziri ND, Zhao Y, Pahl MV. Altered intestinal microbial flora and impaired epithelial barrier structure and function in CKD: the nature, mechanisms, consequences and potential treatment. Nephrology Dialysis Transplantation 2016;31(5):737–746. Doi: 10.1093/ndt/gfv095. Doi: 10.1093/ndt/gfv095</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit60"><label>60</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Hill C, Guarner F, Reid G et al. Expert consensus document. The International Scientific Association for Probiotics and Prebiotics consensus statement on the scope and appropriate use of the term probiotic. Nat Rev Gastroenterol Hepatol 2014; 11: 506–514. Doi: 10.1038/nrgastro.2014.66</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Hill C, Guarner F, Reid G et al. Expert consensus document. The International Scientific Association for Probiotics and Prebiotics consensus statement on the scope and appropriate use of the term probiotic. Nat Rev Gastroenterol Hepatol 2014; 11: 506–514. Doi: 10.1038/nrgastro.2014.66</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit61"><label>61</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Johnson-Henry KC, Hagen KE, Gordonpour M et al. Surface-layer protein extracts from Lactobacillus helveticus inhibit enterohaemorrhagic Escherichia coli O157:H7 adhesion to epithelial cells. Cell Microbiol 2007; 9: 356–367</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Johnson-Henry KC, Hagen KE, Gordonpour M et al. Surface-layer protein extracts from Lactobacillus helveticus inhibit enterohaemorrhagic Escherichia coli O157:H7 adhesion to epithelial cells. Cell Microbiol 2007; 9: 356–367</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit62"><label>62</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Mack DR, Ahrne S, Hyde L, Wei S et al. Extracellular MUC3 mucin secretion follows adherence of Lactobacillus strains to intestinal epithelial cells in vitro. Gut 2003; 52: 827–833</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Mack DR, Ahrne S, Hyde L, Wei S et al. Extracellular MUC3 mucin secretion follows adherence of Lactobacillus strains to intestinal epithelial cells in vitro. Gut 2003; 52: 827–833</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit63"><label>63</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Yan F, Cao H, Cover TL et al. Soluble proteins produced by probiotic bacteria regulate intestinal epithelial cell survival and growth. Gastroenterology 2007; 132: 562–575</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Yan F, Cao H, Cover TL et al. Soluble proteins produced by probiotic bacteria regulate intestinal epithelial cell survival and growth. Gastroenterology 2007; 132: 562–575</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit64"><label>64</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Seth A, Yan F, Polk DB, Rao RK. Probiotics ameliorate the hydrogen peroxide-induced epithelial barrier disruption by a PKCand MAP kinase-dependent mechanism. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol 2008; 294: G1060–G1069</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Seth A, Yan F, Polk DB, Rao RK. Probiotics ameliorate the hydrogen peroxide-induced epithelial barrier disruption by a PKCand MAP kinase-dependent mechanism. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol 2008; 294: G1060–G1069</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit65"><label>65</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Mennigen R, Nolte K, Rijcken E et al. Probiotic mixture VSL#3 protects the epithelial barrier by maintaining tight junction protein expression and preventing apoptosis in a murine model of colitis. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol 2009; 296: G1140–G1149</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Mennigen R, Nolte K, Rijcken E et al. Probiotic mixture VSL#3 protects the epithelial barrier by maintaining tight junction protein expression and preventing apoptosis in a murine model of colitis. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol 2009; 296: G1140–G1149</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit66"><label>66</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Power SE, O’Toole PW, Stanton C et al. Intestinal microbiota, diet and health. Br J Nutr 2014; 111: 387–402. Doi: 10.1017/S0007114513002560</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Power SE, O’Toole PW, Stanton C et al. Intestinal microbiota, diet and health. Br J Nutr 2014; 111: 387–402. Doi: 10.1017/S0007114513002560</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit67"><label>67</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Keddis MT, Khanna S, Noheria A et al. Clostridium difficile infection in patients with chronic kidney disease. Mayo Clin Proc 2012; 87: 1046–1053. Doi: 10.1016/j.mayocp.2012.05.025</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Keddis MT, Khanna S, Noheria A et al. Clostridium difficile infection in patients with chronic kidney disease. Mayo Clin Proc 2012; 87: 1046–1053. Doi: 10.1016/j.mayocp.2012.05.025</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit68"><label>68</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Fayol-Messaoudi D, Berger CN, Coconnier-Polter M-H et al. pH-, Lactic acid-, and non-lactic acid-dependent activities of probiotic Lactobacilli against Salmonella enterica Serovar Typhimurium. Appl Environ Microbiol 2005; 71: 6008–6013</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Fayol-Messaoudi D, Berger CN, Coconnier-Polter M-H et al. pH-, Lactic acid-, and non-lactic acid-dependent activities of probiotic Lactobacilli against Salmonella enterica Serovar Typhimurium. Appl Environ Microbiol 2005; 71: 6008–6013</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit69"><label>69</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Schlee M, Harder J, Koten B et al. Probiotic lactobacilli and VSL#3 induce enterocyte beta-defensin 2. Clin Exp Immunol 2008; 151: 528–535</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Schlee M, Harder J, Koten B et al. Probiotic lactobacilli and VSL#3 induce enterocyte beta-defensin 2. Clin Exp Immunol 2008; 151: 528–535</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit70"><label>70</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Dalmasso G, Cottrez F, Imbert V et al. Saccharomyces boulardii inhibits inflammatory bowel disease by trapping T cells in mesenteric lymph nodes. Gastroenterology 2006; 131: 1812–1825</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Dalmasso G, Cottrez F, Imbert V et al. Saccharomyces boulardii inhibits inflammatory bowel disease by trapping T cells in mesenteric lymph nodes. Gastroenterology 2006; 131: 1812–1825</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit71"><label>71</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Artis D. Epithelial-cell recognition of commensal bacteria and maintenance of immune homeostasis in the gut. Nat Rev Immunol 2008; 8: 411–420</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Artis D. Epithelial-cell recognition of commensal bacteria and maintenance of immune homeostasis in the gut. Nat Rev Immunol 2008; 8: 411–420</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit72"><label>72</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Delzenne NM, Neyrinck AM, Backhed F et al. Targeting gut microbiota in obesity: effects of prebiotics and probiotics. Nat Rev Endocrinol 2011; 7: 639–646. Doi: 10.1038/nrendo.2011.126</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Delzenne NM, Neyrinck AM, Backhed F et al. Targeting gut microbiota in obesity: effects of prebiotics and probiotics. Nat Rev Endocrinol 2011; 7: 639–646. Doi: 10.1038/nrendo.2011.126</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit73"><label>73</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Sayin SI, Wahlstrom A, Felin J et al. Gut microbiota regulates bile acid metabolism by reducing the levels of tauro-betamuricholic acid, a naturally occurring FXR antagonist. Cell Metab 2013; 17: 225–235. Doi: 10.1016/j.cmet.2013.01.003</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Sayin SI, Wahlstrom A, Felin J et al. Gut microbiota regulates bile acid metabolism by reducing the levels of tauro-betamuricholic acid, a naturally occurring FXR antagonist. Cell Metab 2013; 17: 225–235. Doi: 10.1016/j.cmet.2013.01.003</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit74"><label>74</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Begley M, Hill C, Gahan CGM. Bile salt hydrolase activity in probiotics. Appl Environ Microbiol 2006; 72: 1729–1738</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Begley M, Hill C, Gahan CGM. Bile salt hydrolase activity in probiotics. Appl Environ Microbiol 2006; 72: 1729–1738</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit75"><label>75</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Everard A, Belzer C, Geurts L et al. Cross-talk between Akkermansia muciniphila and intestinal epithelium controls dietinduced obesity. Proc Natl Acad Sci USA 2013; 110: 9066–9071. Doi.org/10.1073/pnas.1219451110</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Everard A, Belzer C, Geurts L et al. Cross-talk between Akkermansia muciniphila and intestinal epithelium controls dietinduced obesity. Proc Natl Acad Sci USA 2013; 110: 9066–9071. Doi.org/10.1073/pnas.1219451110</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit76"><label>76</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Hempel S, Newberry S, Ruelaz A et al. Safety of probiotics used to reduce risk and prevent or treat disease. Evid Rep Technol Assess (Full rep) 2011:2000;1–645</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Hempel S, Newberry S, Ruelaz A et al. Safety of probiotics used to reduce risk and prevent or treat disease. Evid Rep Technol Assess (Full rep) 2011:2000;1–645</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit77"><label>77</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Ramezani A, Massy ZA, Meijers B et al. Role of the Gut Microbiome in Uremia: A Potential Therapeutic Target. Am J Kidney Dis 2016; 67(3): 483–498.Doi: 10.1053/j.ajkd.2015.09.027</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Ramezani A, Massy ZA, Meijers B et al. Role of the Gut Microbiome in Uremia: A Potential Therapeutic Target. Am J Kidney Dis 2016; 67(3): 483–498.Doi: 10.1053/j.ajkd.2015.09.027</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit78"><label>78</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Simenhoff ML, Dunn SR, Zollner GP et al. Biomodulation of the toxic and nutritional effects of small bowel bacterial overgrowth in end-stage kidney disease using freeze-dried Lactobacillus acidophilus. Miner Electrolyte Metab 1996; 22: 92–96</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Simenhoff ML, Dunn SR, Zollner GP et al. Biomodulation of the toxic and nutritional effects of small bowel bacterial overgrowth in end-stage kidney disease using freeze-dried Lactobacillus acidophilus. Miner Electrolyte Metab 1996; 22: 92–96</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit79"><label>79</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Ranganathan N, Patel B, Ranganathan P et al. Probiotic amelioration of azotemia in 5/6th nephrectomized Sprague-Dawley rats. Scietific World Journal 2005; 5: 652–660</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Ranganathan N, Patel B, Ranganathan P et al. Probiotic amelioration of azotemia in 5/6th nephrectomized Sprague-Dawley rats. Scietific World Journal 2005; 5: 652–660</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit80"><label>80</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Ranganathan N, Friedman EA, Tam P et al. Probiotic dietary supplementation in patients with stage 3 and 4 chronic kidney disease: a 6-month pilot scale trial in Canada. Curr Med Res Opin 2009;25: 1919–1930</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Ranganathan N, Friedman EA, Tam P et al. Probiotic dietary supplementation in patients with stage 3 and 4 chronic kidney disease: a 6-month pilot scale trial in Canada. Curr Med Res Opin 2009;25: 1919–1930</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit81"><label>81</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Ranganathan N, Ranganathan P, Friedman EA et al. Pilot study of probiotic dietary supplementation for promoting healthy kidney function in patients with chronic kidney disease. Adv Ther 2010; 27:634–647</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Ranganathan N, Ranganathan P, Friedman EA et al. Pilot study of probiotic dietary supplementation for promoting healthy kidney function in patients with chronic kidney disease. Adv Ther 2010; 27:634–647</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit82"><label>82</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Wang IK, Wu YY, Yang YF et al. The effect of probiotics on serum levels of cytokine and endotoxin in peritoneal dialysis patients: a randomised, double-blind, placebo-controlled trial. Benef Microbes 2015; 6(4):423–430. doi: 10.3920/BM2014.0088</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Wang IK, Wu YY, Yang YF et al. The effect of probiotics on serum levels of cytokine and endotoxin in peritoneal dialysis patients: a randomised, double-blind, placebo-controlled trial. Benef Microbes 2015; 6(4):423–430. doi: 10.3920/BM2014.0088</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit83"><label>83</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Rossi M, Johnson DW, Morrison M et al. Synbiotics Easing Renal Failure by Improving Gut Microbiology (SYNERGY): A Randomized Trial. Clin J Am Soc Nephrol 2016;11(2):223–231</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Rossi M, Johnson DW, Morrison M et al. Synbiotics Easing Renal Failure by Improving Gut Microbiology (SYNERGY): A Randomized Trial. Clin J Am Soc Nephrol 2016;11(2):223–231</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit84"><label>84</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Vanholder R, Glorieux G. The intestine and the kidneys: A bad marriage can be hazardous. Clin Kidney J 2015; 8: 168–179</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Vanholder R, Glorieux G. The intestine and the kidneys: A bad marriage can be hazardous. Clin Kidney J 2015; 8: 168–179</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit85"><label>85</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Mishima E, Fukuda Sh, Mukawa Ch. Evaluation of the impact of gut microbiota on uremic solute accumulation by a CETOFMS–based metabolomics approach. Kidney International 2017; 92 (2): 634–645</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Mishima E, Fukuda Sh, Mukawa Ch. Evaluation of the impact of gut microbiota on uremic solute accumulation by a CETOFMS–based metabolomics approach. Kidney International 2017; 92 (2): 634–645</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit86"><label>86</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Vaziri ND. CKD impairs barrier function and alters microbial flora of the intestine: a major link to inflammation and uremic toxicity. Curr Opin Nephrol Hypertens 2012; 21: 587–592</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Vaziri ND. CKD impairs barrier function and alters microbial flora of the intestine: a major link to inflammation and uremic toxicity. Curr Opin Nephrol Hypertens 2012; 21: 587–592</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit87"><label>87</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Mora D, Arioli S. Microbial urease in health and disease. PLoS Pathog 2014;10(12):e1004472. doi: 10.1371/ journal.ppat.1004472; Rutherford JC. The emerging role of urease as a general microbial virulence factor. PLoS Pathog 2014;10(5):e1004062. doi:10.1371/journal.ppat.1004062</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Mora D, Arioli S. Microbial urease in health and disease. PLoS Pathog 2014;10(12):e1004472. doi: 10.1371/ journal.ppat.1004472; Rutherford JC. The emerging role of urease as a general microbial virulence factor. PLoS Pathog 2014;10(5):e1004062. doi:10.1371/journal.ppat.1004062</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit88"><label>88</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Hida M, Aiba Y, Sawamura S et al. Inhibition of the accumulation of uremic toxins in the blood and their precursors in the feces after oral administration of Lebenin, a lactic acid bacteria preparation, to uremic patients undergoing hemodialysis. Nephron 1996;74:349–355</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Hida M, Aiba Y, Sawamura S et al. Inhibition of the accumulation of uremic toxins in the blood and their precursors in the feces after oral administration of Lebenin, a lactic acid bacteria preparation, to uremic patients undergoing hemodialysis. Nephron 1996;74:349–355</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit89"><label>89</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Prakash S, Chang TM. Microencapsulated genetically engineered live E. coli DH5 cells administered orally to maintain normal plasma urea level in uremic rats. Nat Med 1996; 2: 883–887</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Prakash S, Chang TM. Microencapsulated genetically engineered live E. coli DH5 cells administered orally to maintain normal plasma urea level in uremic rats. Nat Med 1996; 2: 883–887</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit90"><label>90</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Swanson KS, Grieshop CM, Flickinger EA. Fructooligosaccharides and Lactobacillus acidophilus modify bowel function and protein catabolites excreted by healthy humans. J Nutr 2002; 132: 3042–3050</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Swanson KS, Grieshop CM, Flickinger EA. Fructooligosaccharides and Lactobacillus acidophilus modify bowel function and protein catabolites excreted by healthy humans. J Nutr 2002; 132: 3042–3050</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit91"><label>91</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Ando Y, Miyata Y, Tanba K et al. Effect of oral intake of an enteric capsule preparation сontaining Bifidobacterium longum on the progression щf chronic renal failure. Nihon Jinzo Gakkai Shi 2003;45:759–764</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Ando Y, Miyata Y, Tanba K et al. Effect of oral intake of an enteric capsule preparation сontaining Bifidobacterium longum on the progression щf chronic renal failure. Nihon Jinzo Gakkai Shi 2003;45:759–764</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit92"><label>92</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Takayama F, Taki K, Niwa T. Bifidobacterium in gastroresistant seamless capsule reduces serum levels of indoxylsulfate in patients on hemodialysis. Am J Kidney Dis 2003;41:S142–145</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Takayama F, Taki K, Niwa T. Bifidobacterium in gastroresistant seamless capsule reduces serum levels of indoxylsulfate in patients on hemodialysis. Am J Kidney Dis 2003;41:S142–145</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit93"><label>93</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Taki K, Takayama F, Niwa T. Beneficial effects of Bifidobacteria in a gastroresistant seamless capsule on hyperhomocysteinemia in hemodialysis patients. J Ren Nutr 2005;15:77–80</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Taki K, Takayama F, Niwa T. Beneficial effects of Bifidobacteria in a gastroresistant seamless capsule on hyperhomocysteinemia in hemodialysis patients. J Ren Nutr 2005;15:77–80</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit94"><label>94</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">de Preter V, Vanhoutte T, Huys G et al. Baseline microbiota activity and initial bifidobacteria counts influence responses to prebiotic dosing in healthy subjects. Aliment Pharmacol Ther 2008; 27: 504–513</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">de Preter V, Vanhoutte T, Huys G et al. Baseline microbiota activity and initial bifidobacteria counts influence responses to prebiotic dosing in healthy subjects. Aliment Pharmacol Ther 2008; 27: 504–513</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit95"><label>95</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Nakabayashi I, Nakamura M, Kawakami K et al. Effects of synbiotic treatment on serum level of p-cresol in haemodialysis patients: a preliminary study. Nephrol Dial Transplant. Nephrol Dial Transplant 2011; 26(3):1094–1098. doi: 10.1093/ndt/gfq624</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Nakabayashi I, Nakamura M, Kawakami K et al. Effects of synbiotic treatment on serum level of p-cresol in haemodialysis patients: a preliminary study. Nephrol Dial Transplant. Nephrol Dial Transplant 2011; 26(3):1094–1098. doi: 10.1093/ndt/gfq624</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit96"><label>96</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Ogawa T, Shimada M, Nagano N et al. Oral administration of Bifidobacterium longum in a gastro-resistant seamless capsule decreases serum phosphate levels in patients receiving haemodialysis. Clin Kidney J 2012;5:373–374</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Ogawa T, Shimada M, Nagano N et al. Oral administration of Bifidobacterium longum in a gastro-resistant seamless capsule decreases serum phosphate levels in patients receiving haemodialysis. Clin Kidney J 2012;5:373–374</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit97"><label>97</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Alatriste MPV, Arronte UR, Espinosa GCO et al. Effect of probiotics on human blood urea levels in patients with chronic renal failure. Nutr Hosp 2014;29:582–590</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Alatriste MPV, Arronte UR, Espinosa GCO et al. Effect of probiotics on human blood urea levels in patients with chronic renal failure. Nutr Hosp 2014;29:582–590</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit98"><label>98</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Cruz-Mora J, Martínez-Hernández NE, Martín del Campo-López F et al. Effects of a symbiotic on gut microbiota in Mexican patients with end-stage renal. J Ren Nutr 2014 Sep;24(5): 330–335. doi: 10.1053/j.jrn.2014.05.006</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Cruz-Mora J, Martínez-Hernández NE, Martín del Campo-López F et al. Effects of a symbiotic on gut microbiota in Mexican patients with end-stage renal. J Ren Nutr 2014 Sep;24(5): 330–335. doi: 10.1053/j.jrn.2014.05.006</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit99"><label>99</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Guida B, Germano R, Trio R et al. Effect of short – term symbiotic treatment on plasma p-cresol levels in patients with chronic renal failure: A ranlomized clinical trial. Nutr Metab Cardiovasc Dis 2014; 24: 1043–1049</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Guida B, Germano R, Trio R et al. Effect of short – term symbiotic treatment on plasma p-cresol levels in patients with chronic renal failure: A ranlomized clinical trial. Nutr Metab Cardiovasc Dis 2014; 24: 1043–1049</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit100"><label>100</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Natarajan R, Pechenyak B, Vyas U et al. Randomized controlled trial of strain-specific probiotic fórmulation (Renadyl) in dialysis patients. Biomed Res Int 2014;2014:568–571</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Natarajan R, Pechenyak B, Vyas U et al. Randomized controlled trial of strain-specific probiotic fórmulation (Renadyl) in dialysis patients. Biomed Res Int 2014;2014:568–571</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit101"><label>101</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Viramontes-Hörner D, Márquez-Sandoval F, Martín-delCampo F et al. Effect of a symbiotic gel (Lactobacillus acidophilus + Bifidobacterium Lactis + Inulin) on presence and severity of gastrointestinal symptoms in hemodialysis patients. J Ren Nutr 2015; 25:284–291</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Viramontes-Hörner D, Márquez-Sandoval F, Martín-delCampo F et al. Effect of a symbiotic gel (Lactobacillus acidophilus + Bifidobacterium Lactis + Inulin) on presence and severity of gastrointestinal symptoms in hemodialysis patients. J Ren Nutr 2015; 25:284–291</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit102"><label>102</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Pavan M. Influence of prebiotic and probiotic supplementation on the progression of chronic kidney disease. Minerva Urol Nephrol 2016;68(2):222–226</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Pavan M. Influence of prebiotic and probiotic supplementation on the progression of chronic kidney disease. Minerva Urol Nephrol 2016;68(2):222–226</mixed-citation></citation-alternatives></ref></ref-list><fn-group><fn fn-type="conflict"><p>The authors declare that there are no conflicts of interest present.</p></fn></fn-group></back></article>
