Острое повреждение почек (ОПП) имеет важ­ное значение не только в краткосрочной, но и в долгосрочной перспективе. Частота ОПН в от­делениях интенсивной терапии составляет от 5 до 15% [1]. При этом, у 5% пациентов для ее коррекции было необходимо проведение заме­стительной почечной терапии (ЗПТ) [2]. Влияние ЗПТ изменяет течение ОПП, однако, несмотря на это, даже в ведущих клиниках всего мира, леталь­ность сохраняется на уровне 55-75% и не снижается в течение последних десятилетий [3, 4]. В клинической практике самой частой формой ОПП является преренальная форма (50-75%), которая характеризуется фазностью течения: период ги­поперфузии (ишемии) сменяется периодом репер­фузии [5]. Это требует обязательного мониторин­га ряда показателей и адекватной коррекции вы­являемых изменений. Однако серьезной задачей остается поиск и тестирование новых лекарствен­ных средств, которые могут быть использованы не только с леченбными, но и профилактическими целями.

Альфа-1 кислый гликопротеин (АГП) являет­ся одним из главных представителей семейства острофазовых белков. Концентрация АГП повы­шается при многих патологических состояниях, в частности, при острых нарушениях кровообра­щения [6, 7], травмах и краш-синдроме [8]. Из­мерение его концентрации в крови в клинической практике в настоящее время используется в каче­стве диагностического и прогностического кри­терия. Показано, что АГП участвует в регуляции проницаемости сосудистой стенки, реологиче­ских свойств крови, течения воспалительных про­цессов, а также выступает как фактор, повышаю­щий неспецифическую резистентность организма [9, 10]. Исследование эффективности фармако­логических препаратов, улучшающих микроцир­куляцию за счет воздействия на реологические свойства крови и состояние микроциркуляторного русла, является перспективным направлением лечения острой дисфункции почек.

Целью данной работы являлось выявление специфической фармакологической активности препарата «Орозин» в условиях эксперименталь­ной модели реперфузионного повреждения почек.

План исследования был рассмотрен на засе­дании и одобрен к проведению. Исследование одобрено биоэтической комиссией ЗАО «Санкт-Петербургский институт фармации» и проведе­но на 112 крысах-самцах линии Wistar с массой тела 250-300 г, которые содержались в стандарт­ных условиях вивария в ходе периода адаптации и последующего эксперимента. При выборе доз руководствовались литературными данными о те­рапевтических дозах изучаемых препаратов.

«Орозин» был протестирован в условиях экс­периментальной ишемии-реперфузии в трех до­зах: 233, 466 и 700 мг/кг, что соответствует 1/3 ВТД (высшая терапевтическая доза), 2/3 ВТД и 1 ВТД. В качестве референтного препарата был ис­пользован антигипоксант «Актовегин» [11] в дозе 80 мг/кг, что составляет 1 ВТД для крысы.

Экспериментальное реперфузионное повреж­дение почки моделировали по методу H. Rabb (1995) [12]. В соответствии с методикой в экс­перименте участвовали: интактная группа - без моделирования патологии; ложнооперированная группа - только лапаротомия; контрольная груп­па - моделирование патологии. Для формиро­вания патологии животное погружали в наркоз («Золетил 100», 2,6 мг/кг) и «Ксилазин» (2,6 мг/ кг, при внутривенном введении), после чего фик­сировали на операционном столике. Далее прово­дили срединную лапаротомию, визуализировали правую почку животного, на её сосудистый пучок накладывали две перманентные лигатуры и по­средством пересечения сосудистого пучка между лигатурами проводили правостороннюю нефроэктомию. После правосторонней нефроэктомии визуализировали левую почку животного и ише­мизировали её путем наложения атравматичного зажима на её сосудистый пучок на 45 мин. После начала периода ишемии капсула почки приоб­ретала серый оттенок. После 45 минут ишемии производили реперфузию путем удаления зажи­ма. Сразу после начала реперфузии отмечали по­краснение капсулы почек, что свидетельствовало о восстановлении кровообращения органа. Далее послеоперационная рана была послойно ушита, шов - обработан антисептиком. Препараты вво­дили внутривенно, в два этапа: за 10 мин до осво­бождения от механического пережатия сосудисто­го пучка почки и через 30 мин после реперфузии.

Эвтаназию 50% особей каждой эксперимен­тальной группы проводили через 2 ч после нача­ла реперфузии, оставшихся особей - через 24 ч. Во время эвтаназии производили забор венозной крови для оценки уровня креатинина и мочевины путем стерильного обескровливания из полостей сердца. Биохимические показатели крови опре­деляли на биохимическом анализаторе «А-25» (Испания) с использованием реагентов фирмы «BioSystems» (Испания) в пробах сыворотки кро­ви без следов гемолиза.

В процессе некропсии вычленяли левую почку у каждого животного, затем фиксировали в 10% растворе забуференного формалина. Материал для гистологического исследования фиксировали в 10% растворе нейтрального формалина в тече­ние 24 ч, после чего по общепринятой методике заливали в парафин. Затем изготавливали срезы толщиной 5-7 мкм, которые окрашивали гематок­силином и эозином. Морфологическое исследо­вание гистологических препаратов проводилось при помощи светооптического микроскопа «Carl Zeiss» (Германия). Критериями гистологической оценки служили: наличие поражения клубочков, канальцев, воспалительной инфильтрации и не­кроза.

Для оценки результатов исследования ис­пользовали пакет прикладных статистических программ «Statistica 10.0» («StatSoft», США). Результаты представлены в виде среднего ариф­метического ± ошибка средней. Статистическую значимость различий двух средних определяли с помощью t-критерия Стьюдента; частот - χ2- критерия Пирсона. Нулевую статистическую ги­потезу об отсутствии различий и связей отвергали при p<0,05.

В ходе проведения анализа данных, получен­ных через 2 ч после начала реперфузии, было выявлено достоверное увеличение уровня креа- тинина и мочевины в крови животных экспери­ментальных групп по сравнению с показателями интактной и ложнооперированной групп.

На рис. 1, 2 представлены данные по влиянию исследуемых препаратов на концентрации креатинина и мочевины через 24 ч после начала ре­перфузии.

Анализ данных, полученных через 24 ч по­сле реперфузии, выявил достоверное увеличение уровней креатинина и мочевины эксперименталь­ных групп, которым было проведено моделирова­ние патологии в отличие от интактной и ложноо- перированной групп. При этом уровень креатинина и мочевины в группах, получавших иссле­дуемые препараты, был достоверно ниже уровня таковых показателей контрольной группы.

Уровни креатинина и мочевины после введе­ния «Орозина» были ниже на 76 и 39% соответ­ственно по отношению к концентрациям изучае­мых показателей крови в контрольной группе че­рез 24 ч после моделирования экспериментальной патологии. В группах, получавших «Орозин», не было отмечено достоверных различий по эффек­тивности исследованных доз препарата, что гово­рит о широте его терапевтического действия. Ана­логичный эффект оказал и «Актовегин» - на фоне его введения отмечали снижение уровня креати­нина на 69% и мочевины на 24%. На основании этого был сделан вывод о наличии нефропротек- торного действия у исследуемых препаратов.

У животных после воспроизведения патоло­гии отмечали набухание эпителия с увеличением объема клеток, а также исчезновение щеточной каймы, явления кариопикноза, отслоение клеток от базальной мембраны, их атрофию. Формиро­валась «щитовидная почка» с расширением ка­нальцев, уплощением эпителия, ядра клеток ста­новились мелкими, гиперхромными, в просвете канальцев скапливались эозинофильные гиалиноподобные массы. Крайней степенью поражения являлись некрозы, от локальных, захватывающих небольшие участки, до обширных - глубоких, с некрозами не только канальцев, но и клубочков. Выраженность патологии зависела от группы, но не зависела от времени эвтаназии животных.

Внутри группы частота выраженности микроско­пических изменений была схожа при эвтаназии через 2 и 24 ч после реперфузии.

Максимально выраженные изменения наблю­дались в контрольной группе животных, которые характеризовались значительной дистрофией эпителия и частичным некрозом канальцев. Ги­стологическое строение тканей почек крыс кон­трольной группы представлено на рис. 3, 4.

Наиболее эффективное цитопротекторное дей­ствие отмечено у тестируемого препарата «Орозин» во всех исследованных дозах. Гистологиче­ское строение тканей почек крыс данных экспери­ментальных групп представлено на рис. 5, 6.

Введение «Актовегина» оказало менее выра­женное цитопротекторное действие по сравнению с «Орозином». Гистологическое строение тканей почек крыс, получавших «Актовегин», представ­лено на рис. 7, 8.

При исследовании специфической активности препарата «Орозин» на модели ишемического по­ражения почки с последующей реперфузией было установлено, что он проявляет цитопротекторные свойства в широком терапевтическом диапазоне, вне зависимости от величины использованных доз. Полученные результаты свидетельствуют о восстановлении экскреторной функции почек в сравнении с группой контроля. В ответ на ишеми­ческое и последующее реперфузионное повреж­дение в последующем не наступал некроз тканей почек за счет оказанного цитопротекторного дей­ствия.

Одним из возможных механизмов цитопро- текторного действия АГП может быть их способ­ность быть донаторами и сохранять отрицатель­ный заряд мембран тромбоцитов, перицитов и клеток эндотелия сосудов, что в итоге приводит к снижению микротромбообразования [11]. Други­ми путями реализации антиагрегантного эффекта могут быть: ингибирующее влияние на протром- биназный комплекс, а также на комплекс GPIIb/ IIIa. Антиагрегантные свойства АГП могут реа­лизовываться обособленно, а также совместно с его потенциальным антиоксидантным действием. Для подтверждения данной гипотезы необходимо углубленное изучение антиоксидантных свойств АГП и лекарственных препаратов, разрабатывае­мых на его основе.

Известно, что апоптоз играет немаловажное значение при реперфузионном повреждения тка­ней. При этом нужно иметь в виду два обстоятель­ства: дефицит АТФ в очаге ишемии и развитие воспалительной реакции после реперфузии [14]. АГП, вероятно, играет важную роль при репер- фузионных повреждениях органов и тканей, эф­фективно подавляет ранний и отсроченный апоптоз, снижая активность каспазы-1 и каспазы-3 и блокируя интрануклеосомальный распад ДНК. Тем не менее, точный механизм данного дей­ствия остается неизвестным. Цитопротекторное действие в отношении TNF-α-индуцированного апоптоза может быть связано как с блокировани­ем клеточных TNF-α-рецепторов, так и прямым внутриклеточным действием на прокаспазу-8, 3-каспазу или стресс-активируемую протеинки- назу (JNK). Предполагаемые механизмы цитопро- текторного действия АГП за счет его влияния на активацию и взаимодействие ферментов апоптоза представлены на рис. 9.

Таким образом, на модели экспериментально­го острого повреждения почек было установлено наличие цитопротекторных свойств препарата «Орозин». В качестве механизма действия АГП, за счет которого реализуется выявленный эффект на морфологические структуры почек, были пред­положены следующие гипотетические механиз­мы: влияние препарата на микроциркуляторное русло гломерулярного аппарата с улучшением реологических свойств крови и локального кро­вообращения, антиоксидантный механизм АГП, антиапоптогенное действие АГП на клеточные структуры в очагах ишемии.