Preview

Нефрология

Расширенный поиск

ПРАКТИЧЕСКОЕ ЗНАЧЕНИЕ АНАЛИЗА ВЕЛИЧИНЫ ОСМОЛЯЛЬНОСТИ СЛЮНЫ ЧЕЛОВЕКА В НОРМЕ И ПРИ ПАТОЛОГИИ

https://doi.org/10.24884/1561-6274-2009-13-2-65-74

Полный текст:

Аннотация

ЦЕЛЬ РАБОТЫ исследование динамики показателей осмоляльности слюны женщин с патологическим течением беременности и при парадонтите на фоне беременности. ПАЦИЕНТЫ И МЕТОДЫ. Обследованы 4 группы женщин: контрольная группа небеременных женщин репродуктивного возраста, беременные с физиологически протекающей беременностью (24-28 недель) без признаков заболеваний пародонта (10 человек), беременные с генерализованным пародонтитом I-II степени в период ремиссии (10 человек), женщины с патологическим течением беременности без признаков воспаления пародонта (10 человек). В каждой из групп собирали по 2 пробы слюны, первый сбор слюны проводили утром, натощак. Затем назначали полоскание полости рта 0,9% раствором хлорида натрия и через 30 мин. – вторую порцию слюны. В образцах слюны определяли величину осмоляльности, концентрацию нитритов, общего кальция и неорганических фосфатов, а также содержание молекул средней массы (λ=254нм и 280нм). Методом иммуноферментного анализа в образцах слюны контрольных групп небеременных и беременных, а также женщин с признаками патологического течения беременности определяли содержание эстриола, тестостерона и дегидроэпиандростерон-сульфата. РЕЗУЛЬТАТЫ. Установлено, что слюна является гипоосмотической жидкостью, а полоскание полости рта 0,9% раствором хлорида натрия, в группе практически здоровых небеременных женщин, приводит к снижению осмоляльности слюны. Показано, что физиологическое течение беременности сопровождается снижением содержания в слюне осмотически активных веществ, нитритов и общего кальция, а полоскание полости рта 0,9% раствором хлорида натрия не вызывает уменьшения концентрации осмотически активных веществ в слюне. При патологическом течении беременности не происходит характерного для физиологически протекающей беременности понижения величины содержания в слюне осмотически активных веществ и нитритов. В слюне беременных с парадонтитом регистрируется максимально высокое содержание нитритов и молекул средней массы, а также устойчивое повышение осмоляльности слюны в сравнении со здоровыми беременными. Установлено, что течение парадонтита на фоне беременности характеризуется более высоким уровнем в слюне ДГЭА-сульфата и снижением эстриола, в сравнении с контрольной группой беременных. ЗАКЛЮЧЕНИЕ. Исследование осмотического состава слюны может дать ценную информацию о состоянии полости рта при физиологическом и патологическом течении беременности.

Об авторах

В. Н. Запорожан
Одесский государственный медицинский университет
Украина
Научно-исследовательский институт молекулярно-генетической и клинической  медицины


С. И. Доломатов
Одесский государственный медицинский университет
Украина

Научно-исследовательский институт молекулярно-генетической и клинической  медицины

65026, Одесса, Украина, Валиховский переулок, 2, Одесский государственный медицинский университет



В. А. Жуков
Одесский государственный медицинский университет
Украина
Научно-исследовательский институт молекулярно-генетической и клинической  медицины


И. Д. Атмажов
Одесский государственный медицинский университет
Украина
кафедра черепно-лицевой хирургии


Список литературы

1. Тарасенко ЛМ, Суханова ГА, Мищенко ВП, Непорада КС. Слюнные железы (биохимия, физиология, клинические аспекты). Изд-во НТЛ, Томск, 2002; 124

2. Nejsum LN, Kwon T-H, Jensen UB et al. Functional requirement of aquaporin-5 in plasma membranes of sweat glands. PNAS 2002;99(1):511-516

3. Запорожан ВН, Гоженко АИ, Доломатов СИ, Якименко ЛВ, Москаленко ТЯ, Амбросийчук ЕВ, Доломатова ЕА. Функциональное состояние почек у женщин при нормальном и патологическом течении беременности в условиях водно-солевой нагрузки. Нефрология 2002;6(1):71-74

4. Matsuzaki T, Tajika Y, Ablimit A et al. Aquaporins in the digestive system. Med Electron Microsc 2004;37(2):71-80

5. Walsh NP, Montague JC, Callow N, Rowlands AV. Saliva flow rate, total protein concentration and osmolality as potential markers of whole body hydration status during progressive acute dehydration in humans. Arch Oral Biol 2004;49(2):149-154

6. Saad WA, Gutierrez LI, Guarda IF et al. Nitric oxide of the supraoptic nucleus influences the salivary secretion, sodium renal excretion, urinary volume and arterial blood pressure induced by pilocarpine. Life Sci 2004;74(13):1593-1603

7. Ryu OH, Choi SJ, Linares AM et al. Gingival epithelial cell expression of macrophage inflammatory protein-1alpha induced by interleukin-1beta and lipopolysaccharide. J Periodontol 2007; 78(8):1627-1634

8. Christodoulides N, Floriano PN, Miller CS, Ebersole JL, Mohanty S, Dharshan P. Lab-on-a-chip methods for point-of-care measurements of salivary biomarkers of periodontitis. Ann N Y Acad Sci 2007;1098:411-428

9. Hugoson A, Koch G, Gоthberg C et al. Oral health of individuals aged 3-80 years in Jоnkоping, Sweden during 30 years (1973-2003). I. Review of findings on dental care habits and knowledge of oral health. Swed Dent J 2005;29(4):125-138

10. Jacobs DR, Crow RS, Part V. Molecular and Protein Markers of Disease Subclinical Cardiovascular Disease Markers Applicable to Studies of Oral Health Multiethnic Study of Atherosclerosis. Ann NY Acad Sci 2007;1098:269-287

11. Moutsopoulos NM, Madianos PN. Paradigm of Periodontal Infections. Ann NY Acad Sci 2006;1088:251-264

12. Offenbacher S, Boggess KA, Murtha AP et al. Progressive Periodontal Disease and Risk of Very Preterm Delivery. Obstetrics & Gynecology 2006;107:29-36

13. Lopez ME, Colloca ME, Paez RG et al. Salivary characteristics of diabetic children. Braz Dent J 2003;14(1):26-31

14. Torpet LA, Kragelund C, Reibel J, Nauntofte B. Oral adverse drug reactions to cardiovascular drugs. Crit Rev Oral Biol Med 2004;15(1):28-46

15. Koh D, Chua LH, Yang Y et al. Can salivary lead be used for biological monitoring of lead exposed individuals? Occup Environ Med 2003;60(9):696-698

16. Ghafouri B, Tagesson C, Lindahl M. Mapping of proteins in human saliva using two-dimensional gel electrophoresis and peptide mass fingerprinting. Proteomics 2003;3(6):1003-1015

17. McGehee JW, Johnson RB. Biomarkers of bone turnover can be assayed from human saliva. J Gerontol A Biol Sci Med Sci 2004;59(3):196-200

18. Ozmeric N. Advances in periodontal disease markers. Clin Chim Acta 2004;343(1-2):1-16

19. Sculley DV, Langley-Evans SC. Periodontal disease is associated with lower antioxidant capacity in whole saliva and evidence of increased protein oxidation. Clinical Science 2003;105:167–172

20. Ramsey PS, Andrews WW. Biochemical predictors of preterm labor: fetal fibronectin and salivary estriol. Clin Perinatol 2003;30(4):701-733

21. Емченко НЛ, Цыганенко ОИ, Ковалевская ТВ. Универсальный метод определения нитратов в биосредах организма.Клиническая и лабораторная диагностика 1994 (6):19-20

22. Запорожан ВН, Доломатов СИ. Влияние тироксина на состояние почечного транспорта нитритов и нитратов у крыс. Экспериментальная и клиническая фармакология 2007;70(1):34-39

23. Меньшиков ВВ. Лабораторные методы исследования в клинике: Справочник. Медицина, М., 1987; 368

24. Гаврилов ВБ, Бидула ММ, Фурманчук ДА, Конев СВ, Алейникова ОВ. Оценка интоксикации организма по нарушению баланса между накоплением и связыванием токсинов в плазме. Клиническая и лабораторная диагностика 1999(2):13-17

25. Ma T, Song Y, Gillespie A et al. Defective Secretion of Saliva in Transgenic Mice Lacking Aquaporin-5 Water Channels. J Biol Chem 1999;274(29):20071-20074

26. Evans RL, Park K, Turner RJ, Watson GE, Nguyen H et al. Severe Impairment of Salivation in Na+/K+/2Cl Cotransporter (NKCC1)-deficient Mice. J Biol Chem 2000;275(35):26720-26726

27. Hoffert JD, Leitch V, Agre P, King LS. Hypertonic Induction of Aquaporin-5 Expression through an ERK-dependent Pathway. J Biol Chem 2000;275(12):9070-9077

28. Kim YJ, An JM, Shin DM et al. Staurosporine Mobilizes Ca2+ from Secretory Granules by Inhibiting Protein Kinase C in Rat Submandibular Acinar Cells. J Dent Res 2002;81(11):788-793

29. Kurihara K, Nakanishi N, Amano O et al. Specific expression of an A-kinase anchoring protein subtype, AKAP-150, and specific regulatory mechanism for Na(+),K(+)-ATPase via protein kinase A in the parotid gland among the three major salivary glands of the rat. Biochem Pharmacol 2003;66(2):239-250

30. Nederfors T, Nauntofte B, Twetman S. Effects of furosemide and bendroflumethiazide on saliva flow rate and composition. Arch Oral Biol 2004;49(7):507-513

31. Davison JM, Lindheimer MD. Volume homeostasis and osmoregulation in human pregnancy. Baillieres Clin Endocrinol Metab 1989;3(2):451-472

32. Sewon L, Laine M, Karjalainen S et al. Salivary calcium reflects skeletal bone density of heavy smokers. Arch Oral Biol 2004;49(5):355-358

33. Lauer Th, Preik M, Rassaf T et al. Plasma nitrite rather than nitrate reflects regional endothelial nitric oxide synthase activity but lacks intrinsic vasodilator action. PNAS 2001; 98(22):12814-12819

34. Takahama U, Yamamoto A, Hirota S, Oniki T. Quercetin-dependent reduction of salivary nitrite to nitric oxide under acidic conditions and interaction between quercetin and ascorbic acid during the reduction. J Agric Food Chem 2003; 51(20):6014-6020

35. Реутов ВП, Сорокина ЕГ, Каюшин ЛП. Цикл оксида азота в организме млекопитающих и нитритредуктазная активность гемсодержащих белков. Вопросы медицинской химии 1994;40(6):31-35

36. Lundberg JO, Govoni M. Inorganic nitrate is a possible source for systemic generation of nitric oxide. Free Radic Biol Med 2004;37(3):395-400

37. Palmerini CA, Palombari R, Perito S, Arienti G. NO synthesis in human saliva. Free Radic Res 2003;37(1):29-31

38. Mensinga TT, Speijers GJ, Meulenbelt J. Health implications of exposure to environmental nitrogenous compounds. Toxicol Rev 2003;22(1):41-51

39. Takeda I, Kizu Y, Yoshitaka O, Saito I, Yamane GY. Possible role of nitric oxide in radiation-induced salivary gland dysfunction. Radiat Res 2003;159(4):465-470

40. Dougall HT, Smith L, Duncan C, Benjamin N. The effect of amoxycillin on salivary nitrite concentrations: an important mechanism of adverse reactions? Br J Clin Pharmacol 1995; 39(4):460-462

41. McKnight GM, Smith LM, Drummond RS et al. Chemical synthesis of nitric oxide in the stomach from dietary nitrate in humans. Gut 1997;40(2):211-214

42. Harvey PJ, Morris BL, Miller JA, Floras JS. Estradiol Induces Discordant Angiotensin and Blood Pressure Responses to Orthostasis in Healthy Postmenopausal Women. Hypertension 2005;45(3):399-405

43. Owonikoko TK, Fabucci ME, Brown PR et al. In Vivo Investigation of Estrogen Regulation of Adrenal and Renal Angiotensin (AT1) Receptor Expression by PET. J Nucl Med 2004;45(1):94-100

44. Wu Z, Maric C, Roesch DM et al. Estrogen Regulates Adrenal Angiotensin AT1 Receptors by Modulating AT1 Receptor Translation. Endocrinology 2003;144(7):3251-3261

45. Simoncini T, Genazzani AR, De Caterina R. Towards a molecular understanding of the atheroprotective effects of estrogens: a review of estrogen effects on endothelial activation. Ital Heart J 2000;1(2):104-107

46. Ishisaka A, Ansai T, Soh I et al. Association of Salivary Levels of Cortisol and Dehydroepiandrosterone With Periodontitis in Older Japanese Adults. J Periodontol 2007; 78(9):1767-1773

47. Ripp SL, Falkner KC, Pendleton ML et al. Regulation of CYP2C11 by Dehydroepiandrosterone and Peroxisome Proliferators: Identification of the Negative Regulatory Region of the Gene. Mol Pharmacol 2003;64:113-122

48. Peter M, Dorr HG, Sippell W.G. Changes in the concentrations of dehydroepiandrosterone sulfate and estriol in maternal plasma during pregnancy: a longitudinal study in healthy women throughout gestation and at term. Horm Res 1994;42(6):278-281

49. Valimaa H, Savolainen S, Soukka T et al. Estrogen receptor-beta is the predominant estrogen receptor subtype in human oral epithelium and salivary glands. J Endocrinol 2004; 180(1):55-62

50. Barker EV, Hume R, Hallas A, Coughtrie WH. Dehydroepiandrosterone sulfotransferase in the developing human fetus: quantitative biochemical and immunological characterization of the hepatic, renal, and adrenal enzymes. Endocrinology 1994;134(2):982-989

51. Zhou F, Tanaka K, Soares MJ, You G. Characterization of an organic anion transport system in a placental cell line. Am J Physiol Endocrinol Metab 2003;285:E1103-E1109

52. Kroboth PD, Salek FS, Pittenger AL et al. DHEA and DHEA-S: a review. J Clin Pharmacol 1999;39:327-348

53. Iwasaki Y, Asai M, Yoshida M et al. Dehydroepiandrosterone-Sulfate Inhibits Nuclear Factor-B-Dependent Transcription in Hepatocytes, Possibly through Antioxidant Effect. J Clin Endocrinol Metab 2004;89(7):3449-3454

54. Kerlan V, Nahoul K, Le Martelot MT, Bercovici JP. Longitudinal study of maternal plasma bioavailable testosterone and androstanediol glucuronide levels during pregnancy. Clin Endocrinol (Oxf) 1994;40(2):263-267

55. Reed MJ, Purohit A, Woo LW et al. Steroid Sulfatase: Molecular Biology, Regulation, and Inhibition. Endocrine Reviews 2005;26(2):171-202

56. Young J, Couzinet B, Nahoul K et al. Panhypopituitarism as a Model to Study the Metabolism of Dehydroepiandrosterone (DHEA) in Humans. J Clin Endocrinol Metab 1997;82(8):2578-2585

57. Sandoval DA, Ping L, Neill RA et al. The effects of dehydroepiandrosterone sulfate on counterregulatory responses during repeated hypoglycemia in conscious normal rats. Diabetes 2004;53(3):679-686

58. Moriyama Y, Yasue H, Yoshimura M et al. The Plasma Levels of Dehydroepiandrosterone Sulfate Are Decreased in Patients with Chronic Heart Failure in Proportion to the Severity. J Clin Endocrinol Metab 2000;85(5):1834-1840

59. Simoncini T, Mannella P, Fornari L et al. Dehydroepiandrosterone Modulates Endothelial Nitric Oxide Synthesis Via Direct Genomic and Nongenomic Mechanisms. Endocrinology 2003;144(8):3449-3455

60. Liu D, Dillon JS. Dehydroepiandrosterone Activates Endothelial Cell Nitric-oxide Synthase by a Specific Plasma Membrane Receptor Coupled to Ga1,2,3 . J Biol Chem 2002; 277(24):21379-21388

61. Strott ChA. Sulfonation and Molecular Action. Endocrine Reviews 2002;23(5):703-732


Для цитирования:


Запорожан В.Н., Доломатов С.И., Жуков В.А., Атмажов И.Д. ПРАКТИЧЕСКОЕ ЗНАЧЕНИЕ АНАЛИЗА ВЕЛИЧИНЫ ОСМОЛЯЛЬНОСТИ СЛЮНЫ ЧЕЛОВЕКА В НОРМЕ И ПРИ ПАТОЛОГИИ. Нефрология. 2009;13(2):65-74. https://doi.org/10.24884/1561-6274-2009-13-2-65-74

For citation:


Zaporzhan V.P., Dolomatov S.I., Zhukov V.A., Atmazhov I.Z. THE PRACTICAL SIGNIFICANSE OF DETERMINATION OF THE OSMOLALITY OF THE SALIVA IN HEALTHY AND ILL PATIENTS. Nephrology (Saint-Petersburg). 2009;13(2):65-74. (In Russ.) https://doi.org/10.24884/1561-6274-2009-13-2-65-74

Просмотров: 117


ISSN 1561-6274 (Print)
ISSN 2541-9439 (Online)