ЭРИТРОПОЭТИН СНИЖАЕТ ПРОЯВЛЕНИЯ ОКСИДАТИВНОГО СТРЕССА, ИНДУЦИРОВАННОГО ДОКСОРУБИЦИНОМ, В ПОЧКАХ КРЫС
https://doi.org/10.24884/1561-6274-2005-9-2-96-100
Аннотация
ЦЕЛЬ ИССЛЕДОВАНИЯ. Целью исследования явилось определение возможности коррекции эритропоэтином оксидатив ного стресса, индуцированного доксорубицином, в почках крыс. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ. Исследование выполнено на беспородных белых крысах. Одной группе животных (группа ДОК, n=7) внутрибрюшинно вводили доксорубицин, другой внутрибрюшинно доксорубицин с одновременным внутривенным введением эритропоэтина (группа ЭПО, n=7). Забой животных, включая контрольную группу (группа Контроль, n=7), проводили через 24 часа. В гомогенате тканей почек исследовали содержание восстановленного глутатиона (ГSH), активность глутатионSтрансферазы (ГSТ), активность цитоплазматической НАД(Ф)Н:хинон оксидоредуктазы 1 (НХО 1), активность глутатион редуктазы (ГР), содержание белковых карбонильных групп. РЕЗУЛЬТАТЫ. Введение доксорубицина привело к снижению уровня ГSH (0,061±0,017 против 0,089±0,011 мкмоль/мг ткани в контрольной группе, p<0,05) и активности ГР (62,10±8,04 против 85,80±7,18 нмоль/мин/мг белка в контрольной группе, p<0,05) в гомогенате почек. Введение эритропоэтина предотвращало снижение ГSH и активности ГР и приводило к увеличению активности НХО 1 в гомогенате почек. Разницы в содержании белковых карбонильных групп в гомогенате почек в исследуемых группах животных не отмечено. ЗАКЛЮЧЕНИЕ. Эритропоэтин ослабляет проявления оксидативного стресса, вызванного доксорубицином, в почках крыс.
Об авторах
Ю. В. Саенко
Ульяновский государственный университет
Россия
Россия
Кафедра фармакологии, Кафедра терапии и профессиональных болезней, медицинский факультет
А. М. Шутов
Ульяновский государственный университет
Россия
Россия
Кафедра фармакологии, Кафедра терапии и профессиональных болезней, медицинский факультет
С. М. Напалкова
Ульяновский государственный университет
Россия
Россия
Кафедра фармакологии, Кафедра терапии и профессиональных болезней, медицинский факультет
О. С. Селиванова
Ульяновский государственный университет
Россия
Россия
Кафедра фармакологии, Кафедра терапии и профессиональных болезней, медицинский факультет
Список литературы
1. Abdelrahman EJ, Sharples MC, McDonald AF et al. Erythropoietin attenuates the tissue injury associated with hemorrhagic shock and myocardial ischemia. Shock 2004; 22: 6369
2. Anusevicius Z, Sarlauscas J, Cenas N. Twoelectron reduction of quinones by rat liver NAD(P)H:quinone oxidoreductase: quantitative structureactivity relationships. Arch Biochem Biophys 2002; 404: 254256
3. Arola O, Saraste A, Pulkki K. Acute doxorubicin cardiotoxicity involves cardiomyocyte apoptosis. Cancer Res 2000; 60: 17891792
4. Basser RL, Green MD. Strategies for prevention of anthracycline cardiotoxicity. Cancer Treat Rev 1993; 19: 57–77
5. Bradford MM. A rapid and sensitive method for quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of proteindye binding. Annal Biochem 1976; 72: 248 254
6. Carlberg I, Mannervik B. Purification and characterization of the flavoenzyme glytathione reductase from rat liver. J Biol Chem 1975; 250: 54755480
7. Celik A, Gokmen N, Erbayraktar S et al. Erythropoietin prevents motor neuron apoptosis and neurologic disability in experimental spinal cord ischemic injury. Proc Natl Acad Sci USA 2002; 99: 2258–2263
8. Dziegiel P, Suder E, Surowiak P et al. Role of exogenous melatonin in reducing the nephrotoxic effect of daunorubicin and doxorubicin in the rat. J Pineal Res 2002; 33: 95100
9. Ellman GL. Tissue sulfhydryl groups. Arch Biochem Biophys 1972; 82: 7077
10. Fisher GR, Gutierrez PL. Free radical formation and DNA strand breakage during metabolism of diaziquone by NAD(P)H quinineacceptor oxidoreductase (DTdiaphorase) and NADPHcytochrome c reductase. Free Radic Biol Med 1991; 10: 359–370
11. Habig WG, Pabst MJ, Jakoby WB. Glutathione S transferase. The first enzymic step in mercapturic acid formation. J Biol Chem 1974; 249: 71307139
12. Klatt P, Lamas S. Regulation of protein function by S glutathiolation in response to oxidative stress. Eur J Biochem 2000; 267: 49284944
13. Levin RL, Garland D, Oliver CN et al. Determination of carbonyl content in oxidatively modified proteins. Methods Enzym 1990; 186: 464478
14. Minotti G, Cairo G, Monti E. Role of iron in anthracycline cardiotoxicity: new tunes for an old song? FASEB J 1999; 13: 199212
15. Parsa С, Kim J, Riel R et al. Cardioprotective effects of erythropoietin in the reperfused ischemic heart. J Biol Chem 2004; 279: 2065520662
16. Powis G. Free radical formation by antitumor quinones. Free Rad Biol Med 1989; 6: 63101
17. Schafer QF, Buettiner GR. Redox environment of the cell as viewed through the redox state of the glutathione disulfide/ glutathione couple. Free Rad Biol Med 2001; 30: 11911212
18. Siegel D, Gustafson DL, Dehn DL et al. NAD(P)H:Quinone Oxidoreductase 1: role as a superoxide scavenger. Mol Pharmacol 2004; 65: 12381247
19. Sun X, Zhou Z, Kang JY. Attenuation of doxorubicin toxicity in metallothioneinoverexpressing transgenic mouse heart. Cancer Res 2001; 61: 33823387
20. Wang X. The expanding role of mitochondria in apoptosis. Genes Dev 2001; 15: 29222933
Рецензия
При поддержке: Исследование поддержано грантом «Университеты России», Грант УР 11.01.029
Для цитирования:
Саенко Ю.В., Шутов А.М., Напалкова С.М., Селиванова О.С. ЭРИТРОПОЭТИН СНИЖАЕТ ПРОЯВЛЕНИЯ ОКСИДАТИВНОГО СТРЕССА, ИНДУЦИРОВАННОГО ДОКСОРУБИЦИНОМ, В ПОЧКАХ КРЫС. Нефрология. 2005;9(2):96-100. https://doi.org/10.24884/1561-6274-2005-9-2-96-100
For citation:
Saenko Yu.V., Shutov A.M., Napalkova S.M., Selivanova O.S. ERYTHROPOIETIN ATTENUATES MANIFESTATIONS OF OXIDATIVE DOXORUBICIN"INDUCED STRESS IN RAT KIDNEYS. Nephrology (Saint-Petersburg). 2005;9(2):96-100. (In Russ.) https://doi.org/10.24884/1561-6274-2005-9-2-96-100
Просмотров: 173
Послать статью по эл. почте 