УЧАСТИЕ КРОВЕТВОРНЫХ СТВОЛОВЫХ КЛЕТОК В РЕГЕНЕРАЦИИ ПОЧКИ ПРИ ХРОНИЧЕСКОМ ГЛОМЕРУЛОНЕФРИТЕ

ЦЕЛЬ ИССЛЕДОВАНИЯ: изучить возможность участия кроветворных стволовых клеток в регенерации почки при хроническом гломерулонефрите (ХГН) с различной степенью морфологической активности ХГН. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ. Исследования проведены на материале 64 нефробиопсий больных ХГН. Патоморфологическую оценку активности ХГН и выраженности (склероза) осуществляли полуколичественным методом. Иммуногистохимическое исследование нефробиоптатов проводили с использованием моноклональных антител против α-ГМА, CD31, CD34 стрептовидинбиотиновым методом (LSAB-kit компании, DAKO). α-ГМК-актин-маркер миофибробластов, синтезирующих компоненты соединительной ткани. СD31-маркер эндотелия, CD34 – эндотелия и гемопоэтических стволовых клеток. РЕЗУЛЬТАТЫ. При минимальной степени активности ХГН, количество клеток, экспрессирующих СD34 в 18,75% случаев превышало количество клеток, экспрессирующих CD31. Экспрессия α-ГМА миофибробластам выявлена в 28%. При умеренной степени активности повышенная экспрессия CD34 встречалася в 46,15% случаев. Миофибробласты α-ГМА+ выявлены во всех нефробиопсиях. При средней активности ХГН клеточная экспрессия CD34 превышала CD31 в 50%. При высокой степени активности уровень экспрессии СD34 был равен уровню экспрессии СD31. Возможное участие в регенераторном ответе кроветворных стволовых клеток определяли по разнице экспрессии CD31 и CD34. ЗАКЛЮЧЕНИЕ. Кроветворные стволовые клетки с фенотипом CD34+ могут принимать участие в регенерации почки при ХГН.

1. Тареева И.Е. (ред.) Нефрология: Руководство для врачей. Медицина, М., 2000; 215-239

2. Nahas AMEl, Muchaneta-Kubara EC, Essaway M, Soylemezoglu O. Renal fibrosis: Insights into pathogenesis and treatment. Int J Biochem Cells Biol1997; 29(1): 55-62

3. Gonlusen G, Ergin M, Paydas S, Tunali N. The expression of cytoskeletal proteins (alpha-SMA, vimentin, desmin) in kidney tissue: a comperison of fetal, normal kidneys, and glomerulonephritis. New Engl J Med Int Urol Nephrol 2001; 33(2): 299-305

4. Ito T. Stem cells of adult kidney; where are you from? Nephrol Dial Transplant 2003; 18: 641-644

5. Rookmaaker MB, Smits A, Tolboon M et al. Bonemarrow-derived cells contribute to glomerular endothelial repair in experimental glomerulonephritis. Am J Pathol 2003; 163: 553-562

6. Maeshima A, Yamashita S, Nojima Y. Identification of renal progenitor-like tubular cells that participate in the regeneration processes of the kidney. J Am Soc Nephrol 2003; 14: 3138-3146

7. Imai E, Ito T. Can bone marrow differentiate into renal cells? Pediatr Nephrol 2002; 17(10): 790-794

8. Polenakovic M. Glomerular sclerotic area and severity of tubulointerstitial changes – their prognostic significance in IgA nephropathy. XXXV Congress of the European Renal Assosiation European Dialysis and Transplant Assosiation June 6-9, Italy, 1998; 112

9. Киясов АП. Современные технологии морфологических исследований. Казань, Казанский государственный медицинский университет, 2001

10. Suzuki A, Iwatani H, Ito T et al. Platelet-derived growth factor plays a critical role to convert bone marrow cells into glomerular mesangial-like cells. Kidney Int 2004; 65: 15-24

11. AlAwgati Q, Oliver JA. Stem cells in the kidney. Kidney Int 2002; 61:382

12. Badid C, Mounier N, Costa AM, Desmouliere A. Role of myofibroblasts during tissue repair and excessive scarring: interest of their assessment in nephropathies. Histol Histopathol 2000; 15(1): 269-80

13. Nahas AMEl. Plasticity of kidney cells: Role in kidney remodeling and scarring. Kidney Int 2003; 64: 1553-1563

14. Sasaki S, Nishihira J, Ishibashi T et al. Transgene of MIF induces podocyte injury and progressive mesangial sclerosis in the mouse kidney. Kidney Int 2004; 65: 469-481